材料和试剂

琥珀色小瓶
脱盐旋转柱，例如Zeba< sup>旋转脱盐柱，7k MWCO，2ml（Thermo Fisher Scientific，Thermo Scientific& TM，目录号：89889）
15 ml锥形试管
铝箔
离心过滤器，例如Amicon Ultra-15离心过滤器（EMD Millipore，目录号：UFC900308）
标准5毫米NMR管（SP Industries，目录号：535-PP-7）
使用标准方法获得的天然蛋白质的2D [¹ H- ¹⁵ N] -HSQC光谱（Cavanagh等人，1995） />
二硫苏糖醇（DTT）; > 99％纯度（Gold Bio，目录号：DTT50）
氧化氘（D 2 O）; ≥99.8％纯度（Sigma-Aldrich，目录号：617385）
三（羟甲基）氨基甲烷盐酸盐（Tris-HCl）; ≥99％的纯度（Fisher Scientific，目录号：BP153）
氯化钠（NaCl）; ≥99％的纯度（Fisher Scientific，目录号：S271）
S-（1-氧基-2,2,5,5-四甲基-2,5-二氢-1H-吡咯-3-基）甲基（MTSL）甲磺酸酯（多伦多研究化学公司，目录号：O875000）
乙腈; ≥99.9％纯度（Fisher Scientific，目录号：A996）
磷酸二氢钠（NaH 2 PO 4）; ≥98％纯度（Fisher Scientific，目录号：S369）
叠氮化钠≥99％纯度（Fisher Scientific，目录号：S227I）
抗坏血酸钠≥98％纯度（Sigma-Aldrich，目录号：A7631）
标签缓冲液（见配方）
200mM MTSL储备溶液（参见食谱）
实施例NMR缓冲液（参见食谱）
250mM抗坏血酸钠储备溶液（参见食谱）

注意：这些试剂用于根据Sjodt等人，2016获得PRE数据。但是，如果需要，可以使用其他品牌的这些材料。

设备

离心机（Beckman Coulter，型号：Allegra X-14R）
SX4750A摆轮转子（Beckman Coulter，型号：SX4750A ARIES ^TM Roter）
MALDI-TOF质谱仪（Thermo Fisher Scientific，Applied Biosystems ^{TM，型号：Voyager-DE-STR）
注意：本产品已停产。其他MALDI-TOF仪器的实例包括Shimadzu，型号：AXIMA Assurance Linear MALDI-TOF; Bruker，型号：microlex LT/SH。}
NMR实验系统
注意：本方案中使用的NMR实验是Bruker标准脉冲序列文库的一部分，并在装备有三重共振低温探针（Bruker Corporation）的Bruker Avance光谱仪上进行。

软件

NMRPipe（Delaglio等人，1995）
https://www.ibbr.umd.edu/nmrpipe/install.html
Bruker TopSpin ^TM
https://www.bruker.com/nc/服务/支持升级/软件下载/nmr/free-topspin-processing/download-page.html
Sparky（戈达德和Kneller，2008）
https://www.cgl.ucsf.edu/home/sparky/
Microsoft Excel
https://products.office.com/en-us/excel
XPLOR-NIH（Schwieters等人，2003）
https://nmr.cit.nih.gov/xplor-nih/

程序

图1A显示了为了用MTSL标记蛋白质以及如何测量PRE-NMR距离约束而需要执行的步骤的流程图。在该过程中，MTSL探针通过二硫键连接到含有单个半胱氨酸残基的蛋白质上。然后获取和解释NMR光谱以提取距离约束。为了解释NMR光谱，必须首先获得蛋白质的骨架化学位移

图1.硝基氧物标记和代表性PRE数据的流程图。A.一个流程图，描述当用特异性标记蛋白质的硝酸氧自由标记用于PRE衍生的结构研究时所采取的步骤。 B.代表IsdH N2N3的代表性[参见Sjodt等人]。，2016获取更多信息）。盒状区域表示（C）（K499R1和E559R1）所示的每个PRE探针的光谱的代表性部分。 C.显示K499R1（上）和E559R1（底部）探针的选择性距离相关线宽度的放大区域。对于每个探针，反磁性和顺磁性光谱分别显示在左侧和右侧。 D. E559R1探针数据的代表性PRE概况。归一化强度比（I ox/I>红色）显示为残基数的函数。星号描绘了探头的位置。基于NMR光谱的信噪比，比率测量的误差约为10-15％，这可能导致超过1的值。由于操作样品（添加抗坏血酸剂以减少探针），也可能发生错误。和仪器不稳定。通过从比率数据获得的距离限制（Battiste和Wagner，2000）添加±5埃，部分地考虑了这些误差。

分配天然蛋白质的骨架化学位移
1. 获得待用作参考的天然蛋白质的高质量2D [¹ H- ¹⁵ N] -HSQC光谱（基于蛋白质的氨基酸序列的包含适当数目的解析交叉峰的光谱）
2. 使用标准NMR方法分配天然蛋白质中的主链酰胺化学位移（对于标准NMR实验参见Cavanagh等人，1995）。
用单个半胱氨酸残基生成蛋白质突变体
1. 对于这些研究，蛋白质应含有单个半胱氨酸残基。检查蛋白质的一级序列，以确定其是否含有天然半胱氨酸残基，这些残基可能被氮氧自由基探针无意地标记。如有必要，对这些半胱氨酸残基进行保守突变以防止非特异性标记。如果生物化学测定可用于蛋白质，则应进行它们以确保这些突变不会损害其功能。
2. 选择要连接氮氧自由基探针的蛋白质的所需位置。该位置需要在侧链溶剂暴露的残留物处。残留物应位于结构化的环或定义的二级结构内。这是重要的，因为如果探针位于蛋白质的结构上无序的区域，则多肽骨架的增加的灵活性可以降低该技术的定量强度。
3. 进行定点诱变，以在氮氧自由基探针将附着的所需位置引入单个半胱氨酸残基。
4. 纯化含有半胱氨酸突变的N-标记蛋白。使用补充有2.5 mM DTT的缓冲液，以防止会导致蛋白质聚集的分子间二硫键的形成（见注1）。关于蛋白质的表达和纯化的综述，参见Gräslund等人。（2008）
5. 在用MTSL标记纯化的半胱氨酸突变体之前，验证半胱氨酸突变不影响蛋白质的结构。这可以通过比较突变体和天然蛋白质的[¹ H- ¹⁵ N] -HSQC光谱来实现。光谱中交叉峰的化学位移应该相似，仅在突变位点附近发生局部变化。
场地特异性标记蛋白质
以下步骤的目的是用MTSL标记蛋白质的标记纯化的半胱氨酸突变体的¹。注意在还原条件下保持半胱氨酸突变体，直到用MTSL修饰。用于标记蛋白质的装置如图2所示，由锥形管和脱盐柱组成。

图2.用于使用MTSL 标记蛋白质的设备的示意图
1. 缓冲液将¹⁵ N-标记的半胱氨酸突变体交换到补充有新鲜2.5mM DTT的标记缓冲液中。蛋白质浓度应至少为250-300μM
2. 通过将乙腈直接加入到MTSL运输的琥珀小瓶中来制备MTSL的储备溶液。储备溶液的最终浓度应为200mM MTSL。将MTSL储存液储存在-20°C（见注2和3）。
3. 在开始标记反应之前，用标记缓冲液稀释蛋白质至终浓度为250-300μM蛋白质。稀释的蛋白质溶液的最终体积应为1ml。蛋白质应用不含DTT的标记缓冲液进行稀释。从此步骤中，此过程中使用的所有缓冲区不应包含DTT。
4. 按照制造商的说明书，将Zeba旋转脱盐柱与标记缓冲液平衡。
5. 构建将用于标记蛋白质的MTSL溶液。将2.5ml标记缓冲液吸入干净的15 ml锥形管中。将MTSL从储备溶液中加入到锥形管中。添加的量应足以达到MTSL的最终浓度，其为将被标记的蛋白质的摩尔量的10倍（例如，如果反应中的蛋白质的最终浓度将为300μM，则MTSL的浓度应为3mM）。
6. 构建将用于标记蛋白质的仪器（图2）。将平衡的脱盐塔从步骤C5放入锥形管中。该柱将位于含MTSL的溶液之上，并且将留下蛋白质溶液流过的空间。
7. 慢慢地将蛋白质移液到柱的树脂床的中心（图2）
8. 离心机根据制造商的说明。蛋白质将流过柱并进入标记溶液，而存在于蛋白质溶液中的DTT将保留在柱上。在将所有蛋白质溶液洗脱到收集管底部的MTSL溶液中之后，该过程被认为是完全的。这将产生位于锥形管底部的溶液，其总体积为〜3.5ml。丢弃脱盐柱。
9. 用箔包住含有改性反应的锥形管，让其在室温下搅拌孵育15分钟
10. 15分钟后，从储备溶液中加入额外的MTSL至改性反应。添加的MTSL的量应该产生比锥形管中蛋白质浓度大20倍的最终浓度。
11. 将管放回旋转装置，让蛋白质：MTSL混合物在室温下搅拌过夜（〜16h）。
12. 使用新鲜的Amicon Ultra-15离心过滤器将MTSL标记的蛋白质样品交换到所需的NMR缓冲液中。这将清除任何超额（未经承诺的）MTSL（见注释4-6）。如上所述，NMR缓冲液不应含有任何DTT。
13. 通过MALDI-TOF质谱法验证蛋白质是否被MTSL标记。与未分离的蛋白质相比，改性蛋白质的质量应增加〜186Da（附着的探针的重量）。尽管MALDI-TOF不是定量的，但在质谱中蛋白质的90％应用MTSL标记。如果生物化学测定可用于蛋白质，则应对标记的蛋白质进行测试，以验证MTSL附着物不会损害其功能。
14. 对于NMR研究，MTSL修饰的蛋白质应具有〜300μM的终浓度（参见附注7）。 NMR缓冲液应含有8-10％的D 2 O，但不含任何DTT。将样品置于标准NMR管中，并使用箔屏蔽光。
NMR数据采集
1. 使用标准的2D- [¹ H- ¹⁵ N] -HSQC脉冲序列以获得新近MTSL标记的蛋白质的光谱。通常，¹ H和^{15维度分别由2,048个和256个复点定义。此时，样品处于顺磁状态。其光谱应良好分散，表明改性蛋白质折叠而不聚集。}
2. 通过将其溶于NMR缓冲液中制备250mM抗坏血酸钠的储备溶液
3. 在获得顺磁性蛋白质（步骤D1）的[¹ H- ¹⁵ N] -HSQC光谱后，从磁铁中取出NMR管。使用适合于NMR管的长移液管，加入抗坏血酸钠至比标记蛋白质浓度大5倍的终浓度。该步骤应仔细进行，通过缓慢上下移液来混合溶液，同时防止任何样品损失。添加抗坏血酸钠会降低MTSL的不成对电子，形成反磁性状态。让样品在室温下减少至少3小时（不需要搅拌）。
4. 使用与用于获得所记载的顺磁光谱相同的采集参数获得还原反应的MTSL：蛋白质样品的[¹ H- ¹⁵ N] -HSQC光谱步骤D1。

数据分析

处理和分析顺磁和反磁性NMR数据
1. 使用标准软件（例如，NMRPipe [Delaglio等人，1995]或Bruker TopSpin TM软件）处理获得的NMR数据。顺磁性和反磁性数据集都应该进行相同的处理。反磁性和顺磁性样品的代表性如图1B和1C所示。
2. 使用标准软件（例如，Sparky）分析NMR谱（Goddard和Kneller，2008）。应首先分析抗磁谱，因为它与以前分配的天然蛋白质谱最密切相关。使用天然蛋白质的已知化学位移分配抗磁谱中的交叉峰。这可以通过覆盖天然和标记的蛋白质的[¹ H ¹⁵ N] -HSQC光谱，然后转移化学位移分配来实现。光谱中的交叉峰应该覆盖得很好，只有位于附近探针附近的残基的交叉峰发生局部差异。必须非常小心确保分配正确分配。
3. 测量抗磁性蛋白质指定光谱中交叉峰的强度。应注意确保分析的交叉峰值得到很好的解决（参见附注8）。进行强度测量时，请确保在峰值最大值。根据我们的经验，测量峰值高度足以提取距离约束。然而，测量交叉峰值体积也是可以接受的。广泛检查抗磁谱的序列特异性化学位移是非常重要的。使用分析软件生成交叉峰强度列表。该列表应包含交叉峰的强度和残差的身份。
4. 使用用于分析抗磁谱的策略化学位移列表标记顺磁谱中的交叉峰。使用数据分析A3中概述的程序，测量顺磁光谱中孤立交叉峰的峰值强度。如果顺磁谱中的交叉峰显着变宽，使得其强度接近噪声水平（例如，图1C，E559R1顺磁性面板中的残基S563），其强度的精确测量为不可能。因此，这些交叉峰不应用于将NMR数据与原子间距离定量相关，不应进一步分析来自这些交叉峰的强度。然而，应注意在顺磁光谱中表现出明显的线展宽的残基的身份。这是因为在结构计算中仍然可以使用这些氨基酸的距离约束，因为完全扩展表明它们在探针的〜12Å内。使用软件使用分析软件生成交叉峰强度列表。该列表应包含交叉峰的强度和残留物的身份。描述交叉峰强度列表的示例表如表1所示
  表1.峰值强度和比率的样本列表
  
  ^a注意：该数据是从IsdH N2N3的NMR研究（Sjodt等，2016）改编的。
5. 使用标准分析软件（例如，，Microsoft Excel）计算强度比。将反磁性和顺磁性强度列表（从数据分析A3和A4生成）导入单个电子表格。对于每个残留物，使用交叉峰强度数据来计算其在顺磁（I ox）和反磁性（I _Red）状态下的强度比。强度比对蛋白质序列的代表性图示于图1D中
从NMR数据估算距离约束
本节的目的是描述如何将前一节中计算的交叉峰值强度比数据与距离约束相关联。描述顺磁弛豫对交叉峰强度的影响及其与原子间距离的关系的详细描述已在其他地方详细描述（Battiste和Wagner，2000; Clore，2015）。鼓励读者参考这些参考资料，了解基础理论。简而言之，效果可以通过以下等式来描述：

/>
其中，分别为蛋白质的顺磁性和反磁性形式的交叉峰的测量强度，t分别为横向的总进化时间NMR实验期间的质子磁化。 R的值对应于酰胺质子的横向弛豫速率，R 2是质子的固有弛豫，R 2> sup> sp ，是由顺磁探针引起的松弛的贡献。 R 2 ^sp的值取决于r，酰胺质子和探针之间的距离。这个关系是用等式2所示的Solomon-Bloembergen的修改版本来描述的（Solomon and Bloembergen，1956; Battiste和Wagner，2000）

其中，K 是描述旋转的常数（1.23×10 ^-32 cm ⁶ sec ^-2） MTSL自旋标签的性质（Battiste和Wagner，2000），ωh是质子自旋的拉莫尔频率，τC是表观PRE相关时间（Simon < em>等人，2010）。已知ωh，可以基于蛋白质的分子量来估计τC的值（Cavanagh等，1995）），可以使用等式1和2生成校准曲线。该曲线将给定交叉峰的强度比与酰胺质子和探针之间的距离相关。对于MTSL探针，小于1的低氧/低分子比例表明探针和质子原子在13-25范围内，而I /I _red等于〜0和〜1表示探针和质子分别分开小于〜或大于〜30。值得注意的是，校准曲线仅提供原子间距离的估计，因为探头具有显着的灵活性。因此，从强度数据获得的距离约束是不精确的，结构计算策略表示使用多个构象异构体的探针（Iwahara等人，2004; Clore，2015）。
1. 构建距离校准曲线（r）的强度，以及r）。这是通过使用等式1和2，以及蛋白质中结构残基的τsub值和平均酰胺质子线宽（π/R sub2）的估计值来完成的。代表性的校准曲线如图3所示，分别对π/R 2和τC分别使用23Hz和16.4ns的值。
  
  图3.用于估计PRE衍生距离的校准曲线。用于将强度比转换为IsdH N2N3的NMR研究的距离的代表性校准曲线（Sjodt等人，2016）。根据等式1和2，分别使用23Hz和16.4ns的平均线宽（π/R 2 2）和相关时间（τsub）C C来生成该曲线。
2. 使用数据分析B1中生成的校准曲线将实验强度比转换为距离分离。
3. 构建XPLOR-NIH计算中使用的距离限制表（图4）。应使用标准XPLOR-NIH约束表格式，在MTSL环的氮原子和受影响的酰胺质子之间进行距离约束（Schwieters等人，2003）。应该强调，这些距离边界是估计值，不能用作准确的距离测量。计算中采用两种类型的距离约束：
  1. 如果Iox/Ired为0.80，约束被称为"吸引力"，并给出距离数据分析B2的指定距离，误差为±5Å（见注9）。
  2. 如果Iox/Ired≥0.80，约束被称为"排斥性"，并给予20Å的下限距离，无上限距离（Battiste和Wagner，2000; Reckel等人，2011; Gottstein等人，2012）。
    
    图4. XPLOR-NIH约束表的示例。 XPLOR-NIH格式的PRE距离约束输入表的示例。该表由IsdH N2N3（Sjodt等人，2016）的NMR研究改编而成。 "segid ALT"部分识别在三个随机取向中建模到起始结构上的MTSL分子。（有关生成约束表的更多信息，请鼓励读者参考Schwieters等人，2003; Iwahara等人，2004; Sjodt等人al 。，2016）。

笔记

在每次使用前，制作新的DTT溶液。
MTSL将在高浓度的乙腈中沉淀，因此保持原料浓度低于200mM。
MTSL是光和空气敏感的。
确保在步骤C11中广泛洗涤蛋白质。过多的未经承认的MTSL将导致核磁共振实验中的人造物。
应该对所关注的蛋白质优化NMR缓冲液。关于适用于NMR的缓冲液的综述，参见Kelly等人。（2002）。
缓冲液的pH应该基于蛋白质的稳定性来选择，因为一旦连接到蛋白质，MTSL基团是相当稳定的。然而，在碱性pH下，一些游离的MTSL基团可能被水解成硫醇。这些基团可以与剩余的游离MTSL分子发生反应并导致形成二硫键连接的双基，这会降低标记效率。因此，应避免超过中性值的缓冲液。为了解决这种可能性，在标记过程中使用20倍摩尔过量的MTSL以确保蛋白质的有效标记。
蛋白质浓度应保持较低，以防止非特异性分子间PRE效应
据报道，通过PRE效应完全扩展的交叉峰的尾部可以将相邻峰值的高度降低高达15％，导致假的积极扩大效应（Battiste和Wagner，2000）。 />
提供了放置在有吸引力的约束上的大误差范围，以说明MTSL探针的内在灵活性

食谱

标签缓冲区
50mM Tris-HCl（pH7.8）
50 mM NaCl
200毫升MTSL储备溶液
将10mg MTSL溶解于18.92μl乙腈中
实施例NMR缓冲液
20mM NaH 2 PO 4（pH 6.0）
50 mM NaCl
0.01％NaN 3
250mM抗坏血酸钠储备溶液
将49.5毫克抗坏血酸钠溶解于去离子水中至最终体积为1毫升

致谢

该协议由Sjodt等人改编。（2016）。这项工作得到了国家卫生研究院AI52217（至R.T.C.）和美国国家卫生研究院奖F31GM101931（至美国）的支持。

参考文献

Battiste，JL和Wagner，G.（2000）。利用现场定向自旋标记和高分辨率异核核磁共振，对具有有限核过程效应数据的大蛋白进行全局折叠测定。生物化学39（18）：5355-5365。
Bertoncini，CW，Jung，YS，Fernandez，CO，Hoyer，W.，Griesinger，C.，Jovin，TM和Zweckstetter，M。（2005）。长距离三级相互作用的释放增强了天然非结构化α-突触核蛋白的聚集。美国国家科学院院士102（5）：1430-1435。
Cavanagh，J.，Fairbrother，WJ，Palmer，AG和Skelton，NJ（1995）。< a class ="ke-insertfile"href ="https://books.google.com.tw/books?hl= zh-CN&lr =&id = 85rYGWiBJ1kC&oi = fnd&pg = PP1&dq =蛋白质+ NMR +光谱：+原理+和+实践&ots = L4nwFr72uy&sig = 53_rQLZr3vtzZlD08eMJcJhZ-XY&redir_esc = y＃v = onepage&q =蛋白质％20NMR％20光谱％3A％20原则％20和％20实践& = false"target ="_ blank">蛋白质核磁共振光谱：原理与实践 学术出版社 pp：587
Clore，GM（2015）。顺磁松弛的实践方面增强生物大分子。方法Enzymol 564：485-497。
Clore，GM and Iwahara，J。（2009）。用于表征生物大分子及其复合物的瞬时低种群状态的顺磁性松弛增强的理论，实践和应用。 109（9）：4108-4139。 />
Delaglio，F.，Grzesiek，S.，Vuister，GW，Zhu，G.，Pfeifer，J。和Bax，A。（1995）。 NMRPipe：基于UNIX管道的多维光谱处理系统。 J Biomol NMR 6（3）：277-293。
Gräslund，S.，Nordlund，P.，Weigelt，J.，Hallberg，BM，Bray，J.，Gileadi，O.，Knapp，S.，Oppermann，U.，Arrowsmith，C.，Hui，R.，Ming ，J.，dhe-Paganon，S.，Park，HW，Savchenko，A.，Yee，A.，Edwards，A.，Vincentelli，R.，Cambillau，C.，Kim，R.，Kim，SH，Rao ，Z.，Shi，Y.，Terwilliger，TC，Kim，CY，Hung，LW，Waldo，GS，Peleg，Y.，Albeck，S.，Unger，T.，Dym，O.，Prilusky， Sussman，JL，Stevens，RC，Lesley，SA，Wilson，IA，Joachimiak，A.，Collart，F.，Dementieva，I.，Donnelly，MI，Eschenfeldt，WH，Kim，Y.，Stols，L.，Wu ，R.，Zhou，M.，Burley，SK，Emtage，JS，Sauder，JM，Thompson，D.，Bain，K.，Luz，J.，Gheyi，T.，Zhang，F.，Atwell，，Almo，SC，Bonanno，JB，Fiser，A.，Swaminathan，S.，Studier，FW，Chance，MR，Sali，A.，Acton，TB，Xiao，R.，Zhao，L.，Ma， Hunt，JF，Tong，L.，Cunningham，K.，Inouye，M.，Anderson，S.，Janjua，H.，Shastry，R.，Ho，CK，Wang，D.，Wang，H.， M.，Montelione，GT，Stuart，DI， Owens，RJ，Daenke，S.，Schütz，A.，Heinemann，U.，Yokoyama，S.，Büssow，K.and Gunsalus，KC（2008）。< a class ="ke-insertfile"href = https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/18235434"target ="_ blank">蛋白质生产和纯化。方法 5（2）：135-146 。
Goddard，T.D。和Kneller，D.G。（2008）。 Sparky NMR分析软件
Gottstein，D.，Reckel，S.，Dotsch，V。和Guntert，P。（2012）。< a class ="ke-insertfile"href ="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/22560730"target ="_ blank">通过NMR测定膜蛋白质结构的顺磁性松弛增强数据的要求。结构 20（6）：1019-1027。
Iwahara，J.，Schwieters，CD和Clore，GM（2004）。< a class ="ke-insertfile"href ="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/15125681"target = "_blank">用于核磁共振结构细化的组合方法，从与大分子连接的柔性顺磁性基团产生的¹ H顺磁性松弛增强数据。 126（18）：5879-5896。
Kelly，AE，Ou，HD，Withers，R.and Dotsch，V。（2002）。< a class ="ke-insertfile"href ="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/12358548"target ="_ blank">用于高灵敏度NMR测量的低电导率缓冲液.JA Am Chem Soc。124（40）：12013-12019。
Reckel，S.，Gottstein，D.，Stehle，J.，Lohr，F.，Verhoefen，MK，Takeda，M.，Silvers，R.，Kainosho，M.，Glaubitz，C.，Wachtveitl，J.，Bernhard ，F.，Schwalbe，H.，Guntert，P。和Dotsch，V.（2011）。蛋白质视紫红质的解决方案NMR结构。 Angew Chem Int Ed Engl 50（50）：11942-11946。
Roosild，TP，Greenwald，J.，Vega，M.，Castronovo，S.，Riek，R。和Choe，S。（2005）。 Mistic的核磁共振结构，用于膜蛋白表达的膜整合蛋白。科学 307（5713 ）：1317-1321。
Schwieters，CD，Kuszewski，JJ，Tjandra，N.和Clore，GM（2003）。< a class ="ke-insertfile"href ="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/12565051"target ="_ blank"> Xplor-NIH NMR分子结构测定软件包。 Magneto磁盘160（1）：65-73。
Simon，B.，Madl，T.，Mackereth，CD，Nilges，M。和Sattler，M。（2010）。< a class ="ke-insertfile"href ="http：//www.ncbi.nlm .nih.gov/pubmed/20148424"target ="_ blank">一种用于溶液中蛋白质复合物的基于NMR光谱的结构测定的有效方案 Angew Chem Int Ed Engl 11）：1967-1970。
Sjodt，M.，Macdonald，R.，Spirig，T.，Chan，AH，Dickson，CF，Fabian，M.，Olson，JS，Gell，DA and Clubb，RT（2016）。< a class = ke-insertfile"href ="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/25687963"target ="_ blank">来自金黄色葡萄球菌的38.8-kDa三结构域IsdH蛋白的PRE衍生NMR模型表明它自适应地识别人血红蛋白。 J Mol Biol 428（6）：1107-1129。
所罗门，I.和Bloembergen，N.（1956）。< a class ="ke-insertfile"href ="http://scitation.aip.org/content/aip/journal/jcp/25/2/10.1063 /1.1742867"target ="_ blank"> HF分子中的核磁相互作用 J. Chem Phys 25：261.
Tang，C.，Schwieters，CD and Clore，GM（2007）。通过顺磁性核磁共振观察到的载脂蛋白麦芽糖结合蛋白的开 - 关转换。自然 449（7165）：1078-1082。
Villareal，VA，Spirig，T.，Robson，SA，Liu，M.，Lei，B.and Clubb，RT（2011）。瞬时弱蛋白 - 蛋白复合物将血红素转移到金黄色葡萄球菌的细胞壁上。 J. Am Chem Soc 133 （36）：14176-14179。