材料和试剂

1. 70 µm细胞过滤器（BD ，Falcon ，目录号：352350）

2. 35毫米多孔玻璃底盘（Matsunami ，目录号：D141400）

3. 35毫米组织培养皿（BD ，猎鹰，目录号：353001）

4. 50毫升离心管（Thermo ，目录号：339652）

5. 1.5 ml微量管（BIO-BIK，目录号：CF-0150）

6. 0.6 ml微量管（QSP，目录号：502-PLN-Q）

7.产后第0-1天C57BL / 6J小鼠（日本SLC）

8.产后第0-1天GFP :: Cent2小鼠（Higginbotham等，2004）

9. CSII-CMV-Arl13 b ::金星（Matsumoto等，2019）

10. pdTomato-C1-Cent2（dTomato :: Cent2）（Matsumoto等，2019）

11. pCAGGS-dnKif3A （Matsumoto等，2019）

12. pcDNA3.1-EB3-mEGFP（EB 3 :: GFP）（Watanabe et al。，2015）（由藤田卫生大学的Kobu Kaibuchi博士提供）

13.莱博维茨的L-15培养基（GIBCO，目录号：11415-064）

14.神经基础培养基（GIBCO，目录号：21103）

15.青霉素-链霉素（GIBCO，目录号：15140-122）

16. L-谷氨酰胺（GIBCO，目录号：25030）

17. NeuroBrew-21（MACS Miltenyi Biotec ，目录号：130-093-566）

18. DNase I （罗氏，目录号：10-104-159-001）

19. 0.25 ％（w / v ％）胰蛋白酶-1 mmol / L EDTA ·苯酚红500毫升的4Na溶液（WAKO，目录号：201-16945）

20. RPMI-1640培养基（WAKO，目录号：189-02145）

21. Amaxa小鼠神经干细胞Nucleofector试剂盒（Lonza，目录号：VPG-1004）

22. BD Matrigel基质10毫升（BD Biosciences，目录号：354234）

23.胎牛血清（FBS）

24. KE-106（信越有机硅）

25. CAT-R G（信越有机硅）

26.印墨

27.神经基底最终培养基（请参阅食谱）

28. 60％Matrigel / L15 （请参阅食谱）

29. DNase I解决方案（请参阅食谱）

30. 10％FBS / L15 （请参阅食谱）

注：聚乳酸在这项研究中（9-11）使用SMIDS可应请求。

设备

体视显微镜（奥林巴斯，型号：SZ61）
光源和光纤（奥林巴斯，型号：LG-PS2）
显微剪刀（Karl Hammacher GmbH ，型号：HSB014-11）
钳子（夏目制作所株式会社，NAPOX A-1）
超细镊子（Dumont ，型号：DU-5 / 45）
眼科刀（MANI ，型号：MST15）
P1000微量移液器（Nichiryo ，目录号：NPX-1000 ）
P200微量移液器（Nichiryo ，目录号：NPX-200 ）
P20微量移液器（Nichiryo ，目录号：NPX-20）
P2微移液管（GILSON ，目录号：F144801）
Amaxa Nucleofector TM II（龙沙）
离心机（TOMY ，型号：PMC-060）
共焦/超分辨率激光扫描显微镜系统（卡尔·蔡司，型号：带有Airyscan的LSM880）
激光线561 nm（卡尔·蔡司，目录号：000000-1410-117）
RE Argon Laser LGK7812 ML5（Carl Zeiss，目录号：000000-2158-591 ）
台式培养箱（Tokai Hit Co.，Ltd. ，INUG2-WSKM）
CO 2气罐
CO 2培养箱（SANYO ，型号：MCO-18AIC）
保温箱（EYELA ，型号：NDS-500）
水浴

软件

禅（卡尔·蔡司）
FIJI（https://fiji.sc）（Schindelin等人，2012年）
IMARIS（https://imaris.oxinst.com）（Bitplane ，版本7.5.2 ）
EZR （https://www.softpedia.com/get/Science-CAD/EZR.shtml）（神田，2013）

程序

准备35毫米解剖盘
将KE-106 23毫升，CAT-RG 2.3毫升和印度墨水0.6毫升添加到50毫升管中，并使用搅拌棒将其混合，直到硅酮溶液变得均匀为止。
将离心管以3,300 xg离心1分钟，以除去硅树脂溶液中的气泡。
将适量的有机硅溶液添加到35毫米的培养皿中。
通过在60℃下孵育来聚合有机硅溶液 °C在培养箱中放置3小时。

从出生后第0-1天（P0-1）小鼠大脑解剖V-SVZ组织
先前已经公开了在成人大脑中解剖V-SVZ组织的视频和详细程序（Mirza deh等人，2010）。我们的方法是从（Mirzadeh et al。，2010）的方法修改而来，以增加新生V-SVZ-组织中成神经细胞的相对比例。对于迁移的V-SVZ衍生的神经母细胞的体外延时成像，请使用P0-1小鼠大脑。较老的大脑在V-SVZ中包含较少的迁移神经母细胞。

通过体温过低（1-2分钟）麻醉P0-1幼崽并通过颈脱位处死。每个实验组使用3-5只幼崽。每只幼犬在4 °C和10分钟内进行组织解剖（3.-10。）。
使用剪刀在头中线在头皮和颅骨上切开一个切口，并用镊子去除头皮和颅骨的背侧部分。
将大脑提取到35毫米解剖皿中的L15培养基（2-3毫升）中。
分割脑入通过在立体显微镜下沿中线切割用光源两个半球（图1，小号TEP 4）。
查看从背视图大脑半球，并除去隔膜和OB的内侧部分（图1，小号TEP 5）。这种切割使人们能够看到侧脑室的前侧壁。
观看来自侧壁连接面图，并且通过沿着胼胝体切割除去大脑皮层（图1，小号TEP 6）。
查看从背视图大脑，并通过沿侧脑室，其被可视化为裂的后部切削除去海马（图1，小号TEP 7）。
观看来自侧壁连接面视图，取下丘脑和嗅球（图1，小号TEP 8）。结果，现在可以看到侧脑室的整个侧壁。
查看从腹侧或背视脑，并通过沿着V-SVZ和纹状体（图1，之间的边界切割收集V-SVZ组织小号TEP 9）。收集的V-SVZ组织应为半透明的。大量纹状体组织的污染将减少从基质胶中嵌入的细胞聚集体迁移出的成神经细胞的数量。
通过去除腹侧和后V-SVZ（图1，修剪所收集的V-SVZ组织小号TEP 10），以增加神经母细胞在V SVZ组织的相对比例（Doetsch和Alvarez的-Buylla，1996）。

图1.从出生后的小鼠大脑解剖V-SVZ组织。用于步骤插图1-10对应于在描述过程乙小号TEP š分别1-10。红色箭头指示切割线。Mirzadeh et al。展示了解剖V-SVZ组织的原始程序的视频。（2010）。

V-SVZ细胞的解离
将V-SVZ组织与200 µl预热胰蛋白酶-EDTA（37 °C）在室温（RT）下孵育3-4分钟，而无需在1.5 ml微量管中进行移液。
简短地离心管，并去除胰蛋白酶-EDTA。
加入200 µl 10％FBS / L15培养基（用于胰蛋白酶灭活）和8 µl 2 mg / ml DNase，然后使用P200微量移液管将V-SVZ组织分离成单个细胞。
使细胞悬浮液通过70 µm细胞过滤器，以除去组织碎片。
轻轻移液加入800 µl DNase I溶液。
在室温下将试管离心1分钟，然后除去上清液。
轻轻移液，用800 µl DNase I溶液洗涤细胞。
在室温下将试管离心1分钟，然后除去上清液。
继续进行程序D（核转染和基质胶包埋）。当使用由荧光蛋白（标签特定的细胞和/或亚细胞器官的转基因小鼠系例如，GFP :: Cent2只小鼠），则跳过用于质粒转导（步骤D1-D8）中的步骤。

核转染和基质胶包埋
准备小鼠神经干细胞溶液（Lonza，请参阅制造商的说明）。
用轻柔的移液用100 µl小鼠神经干细胞溶液重悬细胞。
向细胞悬液中加入约2.0 µg质粒。如果引入两个或多个质粒，则这些质粒的总量应为〜2.0 µg。
为了标记初级纤毛，我们使用了编码Arl13 b :: Venus的质粒（Matsumoto等，2019）。为了标记基体，我们使用了编码dTomato :: Cent2的质粒（Matsumoto等，2019）。甲GFP :: Cent2转基因小鼠品系（希金波坦等人，2004）也是时间推移成像有用的，因为所有的神经母细胞表达GFP :: Cent2。为了标记微管正末端，我们使用了编码EB 3 :: GFP的质粒（Watanabe等人，2015）。

细胞悬液转移到比色皿使用dropp ER（包含在Amaxa公司的Nucleofector套件）。
使用Amaxa Nucleofector TM II（程序：G-013）将质粒导入细胞。
将400 µl预热的RPMI-1640培养基（37 °C）添加到样品池中。
将细胞悬浮液（总共500 µl）转移到1.5 ml微量管中，并在37°C（水浴）中孵育15分钟，以使细胞恢复。
在室温下将试管离心1分钟，然后除去上清液。
轻轻移液，用200 µl DNase I溶液洗涤细胞，并将细胞悬液转移至0.5 ml PCR管中。
在室温下离心管2分钟。
轻轻移液（图2，第1步），将细胞沉淀物（同时保持其形状）从PCR管转移到35 mm解剖皿中的L-15培养基中。
使用眼科手术刀和超细镊子从细胞沉淀物中制备500 µm x 500 µm x 500 µm细胞聚集体（图2，步骤2）。
小心地将1-5个细胞聚集体转移到35毫米培养皿（4°C）上的第1滴（8 µl）60％Matrigel / L15中，用60％Matrigel / L15代替围绕细胞聚集体的L-15培养基（图2，第3步）。钍的Matrigel电子百分比会影响培养的成神经细胞的迁移行为：个人和链迁移将在50％和70-100％基质胶观察到的，分别。基质胶浓度低于50％将导致胶凝失败（步骤D16）。
小心转移个从1e中的细胞聚集体ST下降到2次60％基质胶/ L15的下降（8微升）在35 mm培养皿（4℃）（图2，步骤4）。在1种的过量体积携带ST下降与细胞聚集体将导致在2基质胶浓度的降低第二降和凝胶化（步骤D16）的故障。
将含2-5个细胞的60％Matrigel / L15加入到35毫米多孔玻璃底皿中（图2，第5步）。
将培养皿在4°C下孵育3分钟，以使细胞聚集物在60％Matrigel / L15中沉淀，然后在37°C在5％CO 2的存在下于37°C孵育15分钟，进行Matrigel凝胶化。
小心添加200 µl Neurobasal最终培养基，并在5％CO 2存在的情况下，在37°C的CO 2培养箱中将细胞聚集体培养2天。

图2. V-SVZ细胞聚集体的制备。用于步骤1-5对应于描述插图P rocedure d步骤1分别1-15。步骤1和3-5中的蓝色和红色箭头分别指示吹气和抽吸的方向。步骤2中的红色箭头表示切割线。星号指示的细胞聚集体（步骤2）应丢弃。这些程序以前已经使用过（Hirota等，2007）。

迁移神经母细胞的体外延时成像
启动起来吨他共聚焦激光扫描显微镜系统和载台顶部孵育室设定为37℃。为了稳定台式培养箱中的培养环境，在无细胞的情况下，在5％CO 2的存在下于37°C孵育1 h 。
将一个装有培养神经母细胞的35毫米玻璃底培养皿放置在台式培养箱中，并在5％CO 2存在下于37°C孵育2小时。
选择合适的物镜。为了对基体和初级纤毛进行延时成像，优选63x油浸物镜。成神经细胞及其初级纤毛的长度通常分别为0.5-3.0μm和60-80μm。由于初级纤毛及其相关结构是微小的亚细胞成分，因此强烈建议将共聚焦或超分辨率激光扫描显微镜用于延时成像，以了解其在成神经细胞迁移中的时空动态。共焦激光扫描显微镜系统中的光学变焦和分辨率设置也可用于提高成像分辨率。
通过调整针孔尺寸，激光强度，检测器增益和所有通道的偏移量，设置共聚焦激光扫描显微镜系统中用于图像采集的激光配置。将针孔设置为1 Arbitrary Unit，以获取基体和初级纤毛的清晰图像。过度的激光强度会在目标成神经细胞及其原纤毛中引起光毒性或光漂白。高灵敏度GaAsP检测器可用于更明亮的延时成像。本研究中使用的激发波长如下：GFP / Venus为488 nm，dTomato为561 nm 。
（可选）通过使用超分辨率方法来提高延时图像的分辨率。对于用于超分辨率成像的设置，请遵循显微镜供应商的说明。在我们的EB3 :: GFP和dTomato :: Cent2成像中，分别使微管聚合和中心粒可视化，我们使用带有Airyscan成像系统（卡尔蔡司）的LSM880，其图像采集设置如下：63x（NA 1.4）油浸没式物镜，SR模式，光学变焦1.8倍，0.043 µm /像素和像素驻留时间2.38 µsec （Matsumoto等，2019）。
设置时间间隔和z间隔，具体取决于实验目的。在我们的实验中（Matsumoto等，2019），神经母细胞中初级纤毛和微管聚合动力学的延时图像分别以1-2分钟和4秒的间隔获取。为了监视迁移的成神经细胞的基体和初级纤毛的动态，以0.6 µm的间隔获取z堆栈图像。
设置成像周期，这取决于实验目的。如果观察到光漂白或光毒性，请降低激光强度，和/或增加z /时间间隔。
开始图像获取。在完成图像获取之后，保存成像文件中通过共聚焦显微镜的供应商所指定的格式（例如，。LSM或。CZI用于卡尔蔡司格式）。如有必要，还保存z堆栈投影图像。

数据分析

迁移神经母细胞及其初级纤毛的三维重建
打开原始成像文件（例如，。LSM或。CZI用于卡尔蔡司格式）来可视化使用IMARIS软件荧光对象。
从“ Surpass”选项卡中选择“ Surfaces”，以在IMARIS界面左上方方框中显示的“ Surpass Scene”文件夹中添加一个新曲面（名为“ Surfaces 1”）（图3，编号1至编号3））。

图3.步骤A-2中的IMARIS接口。数字表示程序的顺序。

[步骤1/4算法]在“ Surpass Scene”文件夹中选择“ Surfaces 1” （图3，No.3），然后在“创建”选项卡底部的“创建”选项卡的“加载参数”中选择“默认”。 IMARIS界面（图4A，No.1和No.2）。然后按“下一步”按钮（图4A，第3号）。

图4.步骤s A3 - A6中的IMA RIS接口。面板（AD）指示步骤s A3 - A6中的程序顺序。

[步骤2/4源通道]从“源通道”中选择感兴趣的通道，然后选中“平滑度”（图4B，No.1和No.2）。“ Surfaces Area Detail Level”最初设置为0.2 µm，影响3D重建的平滑水平。然后在“阈值”中选择“绝对强度”，然后按“下一步”按钮，这将生成3D重建图像（图4B，No.3和No.4）。
[步骤3/4阈值]将通过调整“阈值”的上/下限值（活动区域由黄色表示）来修改生成的3D重建的质量。然后按“下一步”按钮（图4C，No.1和No.2）。
[步骤4/4对表面进行分类]选择“过滤器类型”，和/或调整直方图的上/下限值（活动区域以黄色表示），以优化所生成的3D重建的形态（图4D，否0.1）。如果看不到3D重建，请在“设置”选项卡的“表面样式/质量”中选择“表面” （图4D，编号2）。然后按“完成”按钮（图4D，第3号）。可以使用IMARIS界面左下方所示的“颜色”选项卡更改颜色和透明度（图4D，编号4）。
重复步骤A 2- A 6，直到重建完整的目标结构。
从“编辑”选项卡中选择“显示显示调整”，然后在所有通道中取消选中标记以隐藏原始荧光对象（图5，第1号至第3号）。

图5 。IMARIS在步骤A8中进行接口。数字表示程序的顺序。

使用位平面格式保存文件。
通过选择Imaris界面左下方所示的“录制（红色圆圈）”来生成定时电影文件。图6和Matsumoto等人（图6）显示了移行的神经母细胞及其初级纤毛的延时图像和3D重建示例。（2019）。

图6.时移图像的示例以及培养的迁移神经母细胞及其初级纤毛的3D重建。表达GFP :: Cent2和Arl13b :: Venus的培养迁移神经母细胞的代表性延时图像（A）及其3D重建（B）。Arl13 b :::金星+初级纤毛和GFP :: Cent2 +基体显示为白色（A）。（B）中的绿色和红色分别表示成神经细胞的细胞体和初级纤毛。比例尺，2 µm（A）。图片由Matsumoto等人修改。（2019）。

迁移神经母细胞及其睫状结构的动力学分析
转换的摄像FIL ë到IM年龄序列（例如，。TIF格式）。在超分辨率成像的情况下，首先使用显微镜供应商的软件（例如，卡尔·蔡司的ZEN）从原始数据制作超分辨率图像，然后将其转换为图像序列。
在FIJI中打开图像序列文件。
从“插件”->“跟踪”中选择“ Manual Trac king”插件。
输入“时间间隔”和“ x / y校准”（分辨率）的参数（图7，No.1），这些参数可在原始成像文件中找到（共聚焦显微镜供应商的格式）。
在“跟踪”部分中按“添加跟踪”以开始跟踪感兴趣的结构（细胞，基体，微管正末端等）（图7，第2号）。由于躯体在盐碱化神经元运动过程中会改变其形态，因此请在躯体中心（纵轴和横轴中心）单击以分析迁移的成神经细胞中的躯体运动。对于较小的细胞结构，包括基体和微管正端蛋白，我们追踪点状荧光信号的中心。
跟踪多个连续图像后，在“跟踪”部分中按“结束跟踪”以完成跟踪（图7，第3号）。
重复步骤B 5和B 6，直到跟踪了所有感兴趣的结构。
跟踪完成后，在“显示文本？”框中打勾。在“绘图”部分（图7，第4号）中，然后通过在“绘图”部分（图7，第5号）中按“覆盖点和线”，生成一个包含所有迹线的新文件。将生成的文件另存为tif文件（图8，视频1）。该文件对于在步骤B 11中引用跟踪编号很有用。

电子设备的屏幕描述已自动生成

视频1.手动跟踪成神经细胞的躯体（2号，绿色）和基体（1号，蓝色）

图7.使用FIJI分析迁移的成神经细胞及其睫状结构的动力学。显示了FIJI中的手动跟踪插件界面。数字表示程序的顺序。

图8。手动跟踪成神经细胞的躯体（2号，绿色）和基体（1号，蓝色）的代表性图像。比例尺，5 µm。图片由Matsumoto等人修改。（2019）。此外SE ê视频1。

将生成的记录跟踪结果的表另存为.csv文件。
使用Microsoft Excel打开表文件（.csv或.xls ）。
在所有被跟踪结构的每次会话中，相对坐标，迁移距离和迁移速度都是这样。表中的跟踪号对应于在步骤B 8中生成的tif文件中的号。通过平均每个会话中的迁移速度来计算净迁移速度。
对于盐迁移分析，根据速度标准（12 µm / h）（Matsumoto等人，2019），将成神经细胞的迁移行为分为静止和迁移两个阶段（Matsumoto等，2019），具体取决于细胞类型和实验条件。离子。测量一个盐化迁移周期中静止/迁移阶段的确切时间。
对于亚细胞结构动力学分析（前导过程，基体，微管末端等），请根据在步骤B 9中获得的数值数据分析其方向，轨迹，迁移距离（步幅）和速度。通过使用相对坐标数据绘制图，可以直观地看到亚细胞结构的轨迹和步幅。如步骤B 11中所述，分析亚细胞结构的速度。通过结合静止和迁移阶段的信息（步骤B 12），还将分析那些迁移阶段中亚细胞结构的动力学。使用EZR执行统计分析（Kanda，2013）。
在培养的迁徙成神经细胞的盐分运动过程中，对主导过程，基体，躯体和微管聚合动力学的定量分析实例见（Matsumoto等，2019）。

菜谱

的Neurobasal最终米edium（可以储存在4℃下长达一个星期）
的Neurobasal介质10毫升
2％NeuroBrew-21
2 2mM L-谷氨酰胺
，50U / ml青霉素-链霉素
60％Matrigel / L15 （储存于4°C，在每次实验当天新鲜制备）
Matrigel 60 µl
Leibovitz的L-15培养基40 µl
DNase I溶液（可以在4°C下保存长达一周）
1 mg / ml DNase 400 µl
Leibovitz的L-15培养基10 ml
10％FBS / L15 （可以在4°C下保存长达一个月）
FBS
1毫升Leibovitz的L-15培养基9毫升

致谢

我们感谢JG Gleeson，MK Kaibuchi和S. Ge的材料；H. Oishi和H. Takase提供技术支持。这项工作得到了日本医学研究与发展局（AMED）的研究资助的支持（JP19bm0704033 [KS]，JP19gm1210007 [KS]，JP19jm0210060 [MS和KS]），日本科学促进会（JSPS））KAKENHI （17H01392，19H04757，19H04785，18KK0213 [到KS]，18K14823 [到MS]，16J00373 [给MM] ），双边开放合作的联合研究项目，以KS），格兰特在急救的研究在名古屋市立大学[到KS]，国立生理科学研究所的合作研究计划[到KS]，三菱基金会[到KS]，佳能基金会[到KS]，上原纪念基金会[到KS]，武田科学基金会[到KS和MS] 。MM得到了JSPS奖学金的支持。该协议最初由Matsumoto等描述。（2019）。

利益争夺

作者宣称没有利益冲突。

伦理

所有与活体动物有关的实验均根据名古屋市立大学的准则和法规（批准ID，H27M-10；有效期，2015年4月至2020年3月）进行。

参考文献

Arvidsson，A.，Collin，T.，Kirik ，D.，Kokaia ，Z。和Lindvall ，O。（2002）。中风后成人大脑中内源性前体的神经元替代。Nat Med 8（9）：963-970。
博杜安，JP，Viou ，L.，劳奈，PS，Luccardini，C.，Espeso吉尔，S.，Kiyasova ，V.，Irinopoulou ，T.，Alvarez的，C.，里约热内卢，JP Boudier ，T.，Lechaire ， JP，Kessaris ，N. ，Spassky ，N。和Metin ，C。（2012）。切向迁移的神经元会组装一个初级纤毛，从而促进其重新定向至皮层板。神经元76（6）：1108-1122。
Belvindrah ，R.，Nissant ，A.和Lledo ，PM（2011）。异常的神经元迁移改变了产后嗅球中发育中的神经元的命运。神经科学杂志31（20）：7551-7562。
Breton-Provencher，V.，Lemasson ，M.，Peralta，MR，3rd和Saghatelyan，A.（2009）。成年产生的中间神经元是嗅球网络正常运作和执行选定的嗅觉行为所必需的。神经科学杂志29（48）：15245-15257。
Doetsch ，F。和Alvarez-Buylla，A。（1996）。成年哺乳动物脑中神经元迁移的切线通路网络。PROC国家科科学院科学USA 93（25）：14895-14900。
Gheusi ，G.，Cromer ，H.，McLean，H.，Chazal，G.，Vincent，JD和Lledo ，PM（2000）。在成人嗅球中新产生的神经元对气味识别的重要性。PROC国家科科学院科学USA 97（4）：1823至1828年。
Guemez-Gamboa ，A.，Coufal ，NG和Gleeson，JG（2014）。初级纤毛位于发育中和成熟的大脑中。神经元82（3）：511-521。
Guo，J.，Otis，JM，Higginbotham，H.，Monckton，C.，Cheng，J.，Asokan ，A.，Mykytyn ，K.，Caspary，T.，Stuber，GD和Anton，ES（2017）。初级纤毛信号传导影响神经内连接的发展。Dev Cell 42（3）：286-300 e284。
Higginbotham，H.，Bielas ，S.，Tanaka，T.和Gleeson，JG（2004）。具有绿色荧光蛋白标记的Centrin 2的转基因小鼠品系可以显示活细胞中的中心体。Transgenic Res 13（2）：155-164。
Higginbotham，H.，Eom ，TY，Mariani ，LE，Bachleda ，A.，Hirt，J.，Gukassyan ，V.，Cusack，CL，Lai，C.，Caspary，T.和Anton，ES（2012）。原发纤毛中的Arl13b调节中间神经元在发育中的大脑皮层中的迁移和位置。Dev Cell 23（5）：925-938。
Y.Hirota，T.，Ohshima，T.，Kaneko，N.，Ikeda，M.，Iwasato ，T.，Kulkarni。，AB，Mikoshiba ，K.，Okano，H.和Sawamoto，K.（2007）。细胞周期蛋白依赖性激酶5是控制产后脑室下区成神经细胞迁移所必需的。神经科学杂志27（47）：12829-122838。
Jinnou，H.，Sawada，M.，Kawase，K.，Kaneko，N.，Herranz- Pérez，V.，Miyamoto，T.，Kawaue ，T.，Miyata，T.，Tabata，Y.，Akaike，T 。，García-Verdugo，JM，Ajioka，I.，Saitoh ，S. and Sawamoto，K.（2018）。径向胶质纤维支持新生儿脑损伤后神经元的迁移和再生。细胞干细胞22：128-137。
神田（Y）（2013）。免费提供易于使用的医学统计软件“ EZR”的调查。骨髓移植48（3）：452-458。
金子，N.，Herranz -Perez，五，大冢，T.，佐野，H.，大野，N.，奥玛特，T.，阮，HB，泰国，TQ，南部，A.，川口，Y.， Garcia-Verdugo，JM和Sawamoto，K.（2018）。新的神经元使用Slit-Robo信号在神经胶质网中迁移并到达病变部位以进行功能再生。Sci Adv 4（12）：eaav0618。
的Kreuzberg，M.，Kanov ，E.，吉莫弗耶夫，O.，Schwaninger ，M.，Monyer ，H。和Khodosevich，K。（2010）。缺血性病变后脑室下区衍生的皮质神经发生增加。Exp Neurol 226（1）：90-99。
Lois，C。和Alvarez-Buylla，A。（1994）。成年哺乳动物脑中的长距离神经元迁移。科学264（5162）：1145-1148。
路易斯·C，加西亚·韦尔杜戈JM和阿尔瓦雷斯·布伊拉A.（1996）。神经元前体的链迁移。科学271（5251）：978-981。
拉斯金（MB）（1993）。限制了源自前脑室下区的产后神经元的增殖和迁移。神经元11（1）：173-189。
Malicki ，JJ和CA，Johnson（2017）。纤毛：蜂窝天线和中央处理器。趋势细胞生物学27（2）：126-140。
松本，M.，泽田，M.，加西亚·冈萨雷斯，D.，Herranz -Perez，五，荻野，T.，阮邦，H.，琼泰国，T.，成田机场，K.，熊本，N。，Ugawa ，S.，Saito，Y.，Takeda，S.，Kaneko，N.，Khodosevich，K.，Monyer ，H.，Garcia-Verdugo，JM，Ohno，N.和Sawamoto，K.（2019）。产后大脑中迁移神经母细胞的初级纤毛超微结构的动态变化。神经科学杂志39（50）：9967-9988。
Mirzadeh ，Z.，Doetsch ，F.，Sawamoto，K.，Wichterle ，H.和Alvarez-Buylla，A.（2010）。脑室下区域表面：整个染色和室管膜血流。视力扩展（39）。
莫雷诺，MM，Linster ，C.，Escanilla ，O.，Sacquet ，J.，迪迪埃，A。和Mandairon ，N。（2009）。嗅觉感知学习需要成人神经发生。PROC国家科科学院科学USA 106（42）：17980-17985。
Obernier ，K.和Alvarez-Buylla，A.（2019）。神经干细胞：成年哺乳动物脑中的起源，异质性和调控。发展146（4）。
Ota，H.，Hikita ，T.，Sawada，M.，Nishioka ，T.，Matsumoto，M.，Komura，M.，Ohno，A.，Kamiya ，Y.，Miyamoto，T.，Asai ，N.，A.Enomoto ，M.Takahashi ，K.Kaibuchi ，K.Sobue和K.Sawamoto （2014）。通过Gmip介导的RhoA局部失活来控制出生后大脑中神经元迁移的速度。Nat Commun 5：4532。
Parent，JM，Vexler ，ZS，Gong，C.，Derugin ，N。和Ferriero ，DM（2002）。卒中后大鼠前脑神经发生和纹状体神经元置换。Ann Neurol 52（6）：802-813。
Petri，R.，Pircs ，K.，Jonsson，ME，Akerblom ，M.，Brattas ，PL，Klussendorf ，T.和Jakobsson，J.（2017）。let-7通过自噬的正向调节来调节新生神经元的径向迁移。EMBO J 36（10）：1379-1391。
坂，M.，Ieki ，N.，三好，G.，Mochimaru ，D.，宫地，H.，井村，T.，山口，M.，Fishell ，G.，森，K.，影山，R。和Imayoshi I.（2014）。持续的产后神经发生有助于嗅球神经回路的形成和灵活的嗅觉联想学习。神经科学杂志34（17）：5788-5799。
坂，M.，Imayoshi ，I.，大冢，T.，山口，M.，森，K。和影山，R。（2011）。先天性嗅觉反应需要成人前脑的持续神经发生。PROC国家科科学院科学USA 108（20）：8479-8484。
Sawada，M.，Ohno，N.，Kawaguchi，M.，Huang，SH，Hikita ，T.，Sakurai，Y.，Bang Nguyen，H.，Quynh Thai，T.，Ishido ，Y.，Yoshida，Y. ，H.Nakagawa，H.Uemura和K.Sawamoto（2018）。PlexinD1信号传导控制新生神经元的形态变化和迁移终止。EMBO J 37（4）：e97404。
Schaar ，BT和McConnell，SK（2005）。神经元迁移过程中的细胞骨架协调。PROC国家科科学院科学USA 102（38）：13652-13657。
Schindelin ，J.，阿尔甘-Carreras，I.，雄犬，E.，Kaynig ，V.，Longair ，M.，Pietzsch ，T.，Preibisch ，S.，Rueden酒店，C.，萨尔费尔德，S.，施密德，B ，Tinevez ，JY，White，DJ，Hartenstein，V.，Eliceiri ，K.，Tomancak ，P。和Cardona，A。（2012）。斐济：一个用于生物图像分析的开源平台。Nat Methods 9（7）：676-682。
Trivedi，N.，Ramahi ，JS，Karakaya ，M.，Howell，D.，Kerekes ，RA和Solecki ，DJ（2014）。主导过程放线菌素在径向迁移的小脑颗粒神经元中协调细胞器的定位和粘附受体的动力学。神经发展9：26 。
Trivedi，N.，Stabley ，DR，Cain，B.，Howell，D.，Laumonnerie ，C.，Ramahi ，JS，Temirov ，J.，Kerekes ，RA，Gordon-Weeks，PR和Solecki ，DJ（2017）。Drebrin介导的微管-肌动球蛋白偶联引导小脑颗粒神经元核分裂和迁移途径选择。Nat Commun 8：14484。
渡边，T.，Kakeno ，M.，松井，T.，杉山，I.，有村，N.，松泽，K.，白须，A.，石馆，F.，西冈，T.，塔亚，S.， Hoshino，M.和Kaibuchi ，K.（2015年）。具有EB1 / 3的TTBK2通过KIF2A磷酸化调节迁移细胞中的微管动力学。J Cell Biol 210（5）：737-751。
山下，T.，二宫，M.，HernándezAcosta，P.，García-Verdugo，JM，Sunabori ，T.，Sakaguchi ，M.，Adachi，K.，Kojima，T.，Hirota，Y.，Kawase，T例如，N。Araki，K。Abe，H。Okano和K. Sawamoto（2006）。脑室下区成神经细胞迁移并分化为中风后成人纹状体中的成熟神经元。神经科学杂志26（24）：6627-6636。
Yang，Z.，Covey，MV，Bitel ，CL，Ni，L.，Jonakait ，GM和Levison，SW（2007）。新生儿缺氧/缺血性损伤后持续的新皮层神经发生。Ann Neurol 61（3）：199-208。
Yang，Z.，You，Y. and Levison，SW（2008）。新生儿缺氧/缺血性脑损伤可诱导纹状体中表达钙调蛋白的中间神经元的产生。J Comp Neurol 511（1）：19-33。