摘要:体细胞核移植(SCNT)又称为体细胞克隆,是利用显微操作技术将体细胞注入去核卵母细胞,使其发生重编程并发育为新的胚胎,这个胚胎最终可发育为动物个体。本文以猴成纤维细胞作为供体细胞描述了体细胞核移植的方法。
关键词: 成纤维细胞, 克隆猴, 体细胞核移植
材料与试剂
实验耗材
- 15 ml离心管(Corning,catalog number:430791)
- 18-G卵泡吸取针(Olympus,catalog number:G19715)
- 移液枪(Eppendorf)
- 40 μm过滤器(FALCON,catalog number:352340)
- 3.5 cm培养皿(Coring,catalog number:430165)
- 6 cm培养皿(Coring,catalog number:430166)
- 10 cm培养皿(Coring,catalog number:430167)
- 口吸管(北京正天,catalog number:BJ-40)
- 毛细玻璃管(Sutter Instrument,catalog number:B100-75-10)
实验试剂 - 0.25% Trypsin-EDTA(Gibco,catalog number:25200-072)
- Dulbecco's Modified Eagle Medium (DMEM)(Gibco,catalog number:11965-092)
- Dimethylsulfoxide (DMSO)(Sigma,catalog number:D2650)
- PVP(Sigma,catalog number:PVP360)
- 细胞松弛素 B(cytochalacin B)(Sigma,catalog number:C6762)
- Fusogenic viral envelop (HVJ-E) (COSMO BIO CO. LTD)
- Ionomycin(碧云天,catalog number:S1672)
- 6-Dimethylaminopurine(Sigma,catalog number:D2629)
- 矿物油(Sigma,catalog number:M8410)
- 肝素钠(上海三杰,catalog number:091201)
- Hyaluronidase(Sigma,catalog number:H3884)
- PBS(Gibco,catalog number:10010-023)
- Tyrode's Albumin Lactate Pyruvate medium with HEPES (TH3) (见溶液配方)
- Hamster embryo culture medium-9 (HECM-9)(见溶液配方)
- CMRL-1066(见溶液配方)
- 成纤维细胞培养基(见溶液配方)
仪器设备
- 振荡器 (Kylin-Bell Lab Instruments, catalog number:QH-600)
- 腹腔镜系统
- 腹腔镜(Olympus, model:OVT-SC2)
- 光源(Olympus,model:CLH-250)
- 显示器(Sony)
- 负压吸卵系统(Cook)
- 管式加热器(Cook)
- 体视显微镜(Olympus,model:SZX7)
- 倒置显微镜(Olympus,model:IX-83).
- 培养箱(Thermo Scientific,model:Forma 3111、Forma 371)
- 离心机 (Eppendorf centrifuge,model:5702 )
- 拉针仪(Sutter Instrument,model:P97)
- 锻针仪(Narishige,model:MF-900)
- 磨针仪 (Narishige,model:EG-400)
- 激光系统(Hamilton Thorne)
- 压电冲击驱动系统(Prime Tech).
- 纺锤成像显微系统(Oosight)
- 显微操作臂(Narishige)
- 微量注射器(Narishige IM-9B)
实验步骤
一、卵母细胞的收集
- 在15 ml离心管中吸入2-3 ml含2.5%肝素的TH3培养基,用37 °C管式加热器预热。将18-G卵泡抽吸针管端塞进 15 ml 离心管中。在腹腔镜系统将滤泡吸取针插入腹腔后点吸卵巢上面的明显卵泡,为防止血液凝固,将采集卵泡液的15 ml离心管装入振荡混合器,在抽吸过程开始后,使用振荡混合器全程运行。
- 取卵结束后,向卵泡液混合物中加入1 ml透明质酸酶(2 mg/ml),使用移液枪吹吸以消化颗粒细胞。用40 μm的细胞过滤器过滤卵泡混合液,以去除血液和颗粒细胞,卵母细胞留在过滤器网膜上。
- 将细胞滤器翻转后使用约10 ml TH3培养基向干净的6 cm培养皿中冲洗,以收集过滤器网膜上的卵母细胞。
- 用口径约300 μm的口吸管在体视显微镜下捡取卵母细胞。收集的卵母细胞在 CMRL-1066培养基中培养。
二、猴子成纤维细胞的准备
猴子成纤维细胞既可以来自食蟹猴流产的胎儿(步骤1-3),也可以来自出生后的食蟹猴(步骤4-6)。
- 对于猴子胎儿成纤维细胞,将胎儿的皮肤全部剥皮并切成小块。
- 将小块组织放入含有DNase (1 mg/ml)和胶原酶IV (0.5 mg/ml)的细胞培养液中,在 37 °C 5% CO2中消化4 h,加入细胞培养液终止消化。收集细胞悬液,用细胞过滤器过滤细胞悬浮液以排除未消化的细胞团。得到单个成纤维细胞,将成纤维细胞以适当密度种植于10 cm培养皿中,记录传代数为P0。
- 第二天,检查培养皿,以确保成纤维细胞贴壁生长。及时更换细胞培养液,直到细胞覆盖培养皿80%-90%的面积,0.25%胰蛋白酶消化后用10% DMSO和90% FBS在冷冻器中冻存细胞,隔天转移液氮中长期保存直到使用。
- 对于出生的成体猴子,从麻醉的猴子身上切下一小块皮肤。用含青霉素和链霉素的 PBS清洗三次,然后切成1-2 mm3小块。
- 将这些组织放入6 cm培养皿中,加入适量的细胞培养基,使所有的皮肤组织都被培养液覆盖,同时不会有切碎的皮肤组织漂浮在培养液中,等待成纤维细胞爬出皮肤组织。
- 当成纤维细胞达到培养皿80%的面积时,用0.25%胰蛋白酶消化成纤维细胞 1 分钟。200 × g离心3 min 后,将成纤维细胞传代至10cm的培养皿中。
- 细胞覆盖培养皿80%-90%的面积时,0.25% 胰蛋白酶消化后用10% DMSO和 90%胎牛血清在冷冻器中冻存细胞,隔天转移液氮中长期保存直到使用。
三、成纤维供体细胞准备
- 从液氮中取1管成纤维细胞,在37 °C水浴中快速解冻。立即将细胞转移到15 ml 的离心管中。加入3-5 ml 细胞培养基,轻轻吹打混匀。
200 × g 离心 3 min 后弃上清。重新加入培养基混匀细胞,将细胞按不同的浓度梯度传代于 48 孔板的2-4孔上,密度梯度为:5×104 孔、3×104 孔、2×104 孔和 1×104孔。 - 将解冻后的细胞在37 °C 5% CO2 中培养,通过细胞生长接触致使大量细胞停留在 G0 期。使用前,用 0.25%胰蛋白酶消化成纤维细胞,37 °C孵育1 min。然后加入2倍体积的细胞培养基终止消化。
- 将细胞混合液200 × g 离心 3 min,弃上清。使用20 μl PBS吹吸细胞沉淀至混合均匀,使用细胞悬浮液进行后续核注射。
四、体细胞核移植
- 在实验前使用P97拉针仪将毛细管玻璃(B100-75-10)拉制合适的长度和并使用MF-900锻针仪准备去核显微操作针注射针和RNA注射针和持卵针,去核针外径8-10 μm,内径 7-9 μm,用1 ml注射器将水银(约2 mm)装入去核移液管后端;用于
注射成纤维细胞的注射针外径为16-18 μm,内径 15-17 μm,之后使用EG-400微型磨针仪倾斜45°磨制体细胞注射针;RNA注射针的制备和去核针相似,在外径为3 μm处断口而后用同样的方法加入2 mm左右的水银柱;持卵针的外径为100 μm,内径为10 μm;以上的针在制备后使用MF-900锻针仪打弯至合适仪器的角度。 - 准备一个玻璃底的操作碟,操作液是CB的终浓度为5 μg/ml的TH3溶液。并滴加 3 μl的10% PVP 液体用来清洗注射针,用矿物油覆盖所有的溶液。
- 将显微操作臂和去核针调至适当位置,使用较大电压脉冲高等速度(5-6)和功率(4-5)在PVP液滴中清洗操作针,将10个MII左右的卵母细胞放入操作滴液中,采用纺锤体成像显微系统观察卵母细胞的纺锤体。在视线下,纺锤看起来像一个明亮的小薄片。
- 用持液针将卵母细胞固定在适当位置,并将纺锤体和去核针调整到同一水平面。使用压电装置以中等速度(2-3)和功率(2-3)打破透明带。携带尽可能少的细胞质将纺锤体吸出(图1. a,b,c)。
- 在一个操作液滴加适量2.5 mol/L融合病毒包膜(HVJ-E),将供体细胞滴加到这个操作滴中。将去核的卵母细胞移入其他操作滴中,用激光破膜仪在透明带打出一个通道。用注射针管吸取病毒液滴的供体细胞通过该通道注射进入卵母细胞(图1. d,e),之后在 37 °C、5% CO2条件下将操作的卵母细胞移入预平衡的HECM-9培养皿中。
- 细胞融合1-2 h后,将胚胎移入含5 mM ionomycin的TH3培养基中5 min,再移入激活液(10 μM TSA和2 mM 6-Dimethylaminopurine的HECM-9 溶液)5 h。激活后,将SCNT胚胎移入TSA终浓度为10 μM的HECM-9培养皿 3-5 h,再转回HECM-9培养皿中。
- 激活6小时后,对胚胎进行RNA注射,RNA注射针放入PVP滴液中清洗。将激活的胚胎转移到操作滴中,注入10个pL Kdm4d mRNA,其浓度在1,000 ng/μL以上(图1. f)。将操作后的胚胎在HECM-9中培养,37 °C,5% CO2,等待胚胎移植。
SCNT 过程图1. a b c 为去核过程;d e 为供体成纤维细胞注射;f. kdm4d mRNA 注射。
溶液配方
- Tyrode's Albumin Lactate Pyruvate medium with HEPES (TH3)(表1)
表1. Tyrode's Albumin Lactate Pyruvate medium with HEPES (TH3) 配制表
成分 | /100ml | /50ml | 备注 |
NaCl | 3.329 ml | 1.665 ml | 200 mg/ml stock |
KCl | 239 μl | 119.5 μl | 100 mg/ml stock |
CaCl2·2H2O | 294 μl | 147 μl | 100 mg/ml stock |
MgCl2·6H2O | 102 μl | 51 μl | 100 mg/ml stock |
NaH2PO4 | 48 μl | 24 μl | 100 mg/ml stock |
NaHCO3 | 210.6 mg | 105.3 mg | |
HEPES | 240 mg | 120 mg | |
D-Glucose | 90 mg | 45 mg | |
Sodium Pyruvate | 12 mg | 6 mg | |
Sodium lactate (60% syrup) | 0.17 ml | 85 μl | |
BSA | 300 mg | 150 mg | |
penicillin-streptomycin (100X) | 1 ml | 500 μl | |
Phenol Red (0.01%) | 10 μl | 5 μl | |
pH | 7.4 | |
- HECM-9(表2)
表2. HECM-9 配制表
成分 | /100ml | 终浓度 |
NaCl | 0.6639 g | 113.6 mmol/L |
KCl | 0.0224 g | 3 mmol/L |
CaCl2·2H2O | 0.0279 g | 1.9 mmol/L |
MgCl2·6H2O | 0.0102 g | 0.5 mmol/L |
NaHCO3 | 0.2100 g | 25 mmol/L |
Sodium lactate (60% syrup) | 0.0504 g | 4.5 mmol/L |
PVA | 0.01 g | 0.1 mg/ml |
1 mol/L HCl | 0.14 ml | 1.4 mmol/ml |
11 AA with Pantothenate | 1 ml | |
100X AA stock |
成分 | MW | 100X 母液浓度 | 终浓度 |
Taurine | 125 | 50 mmol/L | 0.5 mmol/L |
Asparagine | 132 | 1 mmol/L | 0.01 mmol/L |
Cysteine | 121 | 1 mmol/L | 0.01 mmol/L |
Histidine | 155 | 1 mmol/L | 0.01 mmol/L |
Lysine | 146 | 1 mmol/L | 0.01 mmol/L |
Proline | 115 | 1 mmol/L | 0.01 mmol/L |
Serine | 105 | 1 mmol/L | 0.01 mmol/L |
Aspartic acid | 133 | 1 mmol/L | 0.01 mmol/L |
Glycine | 75 | 1 mmol/L | 0.01 mmol/L |
Glutamic acid | 147 | 1 mmol/L | 0.01 mmol/L |
Glutamine | 146 | 20 mmol/L | 0.2 mmol/L |
Pantothenate | 238 | 0.3 mmol/L | 3 μmol/L |
- CMRL-1066(表3)
表3. CMRL-1066 配制表
| /10 ml |
CMRL-1066 | |
10% FBS | 1 ml |
Sodium Pyruvate | 0.4 mg |
Glutamine | 1.5 mg |
Calcium lactate | 5.5 mg |
Estradiol | 1 μl |
Progesterone | 750 μl |
- 成纤维细胞培养基(表4)
表4. 成纤维细胞培养基配制表
成分 | 终浓度 |
FBS | 15% |
penicillin | 100 IU/ml |
streptomycin | 100 IU/ml |
Glycine | 0.1 mM |
L-Alanine | 0.1 mM |
L-Asparagine | 0.1 mM |
L-Aspartic acid | 0.1 mM |
L-Glutamic Acid | 0.1 mM |
L-Proline | 0.1 mM |
L-Serine | 0.1 mM |
glutamax | 2 mM |
sodium pyruvate | 1 mM |
Copyright: © 2023 The Authors; exclusive licensee Bio-protocol LLC.
引用格式:王燕, 许玉婷, 李春杨, 孙强. (2023). 猴体细胞核移植. // 实验动物胚胎操作实验手册.
Bio-101: e1010987. DOI:
10.21769/BioProtoc.1010987.
How to cite: Wang, Y., Xu, Y. T., Li, C. Y., and Sun, Q. (2023). Somatic Cell Nuclear Transfer of Monkeys. // Embryo Manipulation Manual of Laboratory Animals.
Bio-101: e1010987. DOI:
10.21769/BioProtoc.1010987.