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猴体细胞核移植
Somatic Cell Nuclear Transfer of Monkeys   

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摘要:体细胞核移植(SCNT)又称为体细胞克隆,是利用显微操作技术将体细胞注入去核卵母细胞,使其发生重编程并发育为新的胚胎,这个胚胎最终可发育为动物个体。本文以猴成纤维细胞作为供体细胞描述了体细胞核移植的方法。

关键词: 成纤维细胞, 克隆猴, 体细胞核移植

材料与试剂

实验耗材

  1. 15 ml离心管(Corning,catalog number:430791)
  2. 18-G卵泡吸取针(Olympus,catalog number:G19715)
  3. 移液枪(Eppendorf)
  4. 40 μm过滤器(FALCON,catalog number:352340)
  5. 3.5 cm培养皿(Coring,catalog number:430165)
  6. 6 cm培养皿(Coring,catalog number:430166)
  7. 10 cm培养皿(Coring,catalog number:430167)
  8. 口吸管(北京正天,catalog number:BJ-40)
  9. 毛细玻璃管(Sutter Instrument,catalog number:B100-75-10)

实验试剂
  1. 0.25% Trypsin-EDTA(Gibco,catalog number:25200-072)
  2. Dulbecco's Modified Eagle Medium (DMEM)(Gibco,catalog number:11965-092)
  3. Dimethylsulfoxide (DMSO)(Sigma,catalog number:D2650)
  4. PVP(Sigma,catalog number:PVP360)
  5. 细胞松弛素 B(cytochalacin B)(Sigma,catalog number:C6762)
  6. Fusogenic viral envelop (HVJ-E) (COSMO BIO CO. LTD)
  7. Ionomycin(碧云天,catalog number:S1672)
  8. 6-Dimethylaminopurine(Sigma,catalog number:D2629)
  9. 矿物油(Sigma,catalog number:M8410)
  10. 肝素钠(上海三杰,catalog number:091201)
  11. Hyaluronidase(Sigma,catalog number:H3884)
  12. PBS(Gibco,catalog number:10010-023)
  13. Tyrode's Albumin Lactate Pyruvate medium with HEPES (TH3) (见溶液配方)
  14. Hamster embryo culture medium-9 (HECM-9)(见溶液配方)
  15. CMRL-1066(见溶液配方)
  16. 成纤维细胞培养基(见溶液配方)

仪器设备

  1. 振荡器 (Kylin-Bell Lab Instruments, catalog number:QH-600)
  2. 腹腔镜系统
  3. 腹腔镜(Olympus, model:OVT-SC2)
  4. 光源(Olympus,model:CLH-250)
  5. 显示器(Sony)
  6. 负压吸卵系统(Cook)
  7. 管式加热器(Cook)
  8. 体视显微镜(Olympus,model:SZX7)
  9. 倒置显微镜(Olympus,model:IX-83).
  10. 培养箱(Thermo Scientific,model:Forma 3111、Forma 371)
  11. 离心机 (Eppendorf centrifuge,model:5702 )
  12. 拉针仪(Sutter Instrument,model:P97)
  13. 锻针仪(Narishige,model:MF-900)
  14. 磨针仪 (Narishige,model:EG-400)
  15. 激光系统(Hamilton Thorne)
  16. 压电冲击驱动系统(Prime Tech).
  17. 纺锤成像显微系统(Oosight)
  18. 显微操作臂(Narishige)
  19. 微量注射器(Narishige IM-9B)

实验步骤

一、卵母细胞的收集

  1. 在15 ml离心管中吸入2-3 ml含2.5%肝素的TH3培养基,用37 °C管式加热器预热。将18-G卵泡抽吸针管端塞进 15 ml 离心管中。在腹腔镜系统将滤泡吸取针插入腹腔后点吸卵巢上面的明显卵泡,为防止血液凝固,将采集卵泡液的15 ml离心管装入振荡混合器,在抽吸过程开始后,使用振荡混合器全程运行。
  2. 取卵结束后,向卵泡液混合物中加入1 ml透明质酸酶(2 mg/ml),使用移液枪吹吸以消化颗粒细胞。用40 μm的细胞过滤器过滤卵泡混合液,以去除血液和颗粒细胞,卵母细胞留在过滤器网膜上。
  3. 将细胞滤器翻转后使用约10 ml TH3培养基向干净的6 cm培养皿中冲洗,以收集过滤器网膜上的卵母细胞。
  4. 用口径约300 μm的口吸管在体视显微镜下捡取卵母细胞。收集的卵母细胞在 CMRL-1066培养基中培养。

二、猴子成纤维细胞的准备
猴子成纤维细胞既可以来自食蟹猴流产的胎儿(步骤1-3),也可以来自出生后的食蟹猴(步骤4-6)。

  1. 对于猴子胎儿成纤维细胞,将胎儿的皮肤全部剥皮并切成小块。
  2. 将小块组织放入含有DNase (1 mg/ml)和胶原酶IV (0.5 mg/ml)的细胞培养液中,在 37 °C 5% CO2中消化4 h,加入细胞培养液终止消化。收集细胞悬液,用细胞过滤器过滤细胞悬浮液以排除未消化的细胞团。得到单个成纤维细胞,将成纤维细胞以适当密度种植于10 cm培养皿中,记录传代数为P0。
  3. 第二天,检查培养皿,以确保成纤维细胞贴壁生长。及时更换细胞培养液,直到细胞覆盖培养皿80%-90%的面积,0.25%胰蛋白酶消化后用10% DMSO和90% FBS在冷冻器中冻存细胞,隔天转移液氮中长期保存直到使用。
  4. 对于出生的成体猴子,从麻醉的猴子身上切下一小块皮肤。用含青霉素和链霉素的 PBS清洗三次,然后切成1-2 mm3小块。
  5. 将这些组织放入6 cm培养皿中,加入适量的细胞培养基,使所有的皮肤组织都被培养液覆盖,同时不会有切碎的皮肤组织漂浮在培养液中,等待成纤维细胞爬出皮肤组织。
  6. 当成纤维细胞达到培养皿80%的面积时,用0.25%胰蛋白酶消化成纤维细胞 1 分钟。200 × g离心3 min 后,将成纤维细胞传代至10cm的培养皿中。
  7. 细胞覆盖培养皿80%-90%的面积时,0.25% 胰蛋白酶消化后用10% DMSO和 90%胎牛血清在冷冻器中冻存细胞,隔天转移液氮中长期保存直到使用。

三、成纤维供体细胞准备

  1. 从液氮中取1管成纤维细胞,在37 °C水浴中快速解冻。立即将细胞转移到15 ml 的离心管中。加入3-5 ml 细胞培养基,轻轻吹打混匀。
    200 × g 离心 3 min 后弃上清。重新加入培养基混匀细胞,将细胞按不同的浓度梯度传代于 48 孔板的2-4孔上,密度梯度为:5×104 孔、3×104 孔、2×104 孔和 1×104孔。
  2. 将解冻后的细胞在37 °C 5% CO2 中培养,通过细胞生长接触致使大量细胞停留在 G0 期。使用前,用 0.25%胰蛋白酶消化成纤维细胞,37 °C孵育1 min。然后加入2倍体积的细胞培养基终止消化。
  3. 将细胞混合液200 × g 离心 3 min,弃上清。使用20 μl PBS吹吸细胞沉淀至混合均匀,使用细胞悬浮液进行后续核注射。

四、体细胞核移植

  1. 在实验前使用P97拉针仪将毛细管玻璃(B100-75-10)拉制合适的长度和并使用MF-900锻针仪准备去核显微操作针注射针和RNA注射针和持卵针,去核针外径8-10 μm,内径 7-9 μm,用1 ml注射器将水银(约2 mm)装入去核移液管后端;用于
    注射成纤维细胞的注射针外径为16-18 μm,内径 15-17 μm,之后使用EG-400微型磨针仪倾斜45°磨制体细胞注射针;RNA注射针的制备和去核针相似,在外径为3 μm处断口而后用同样的方法加入2 mm左右的水银柱;持卵针的外径为100 μm,内径为10 μm;以上的针在制备后使用MF-900锻针仪打弯至合适仪器的角度。
  2. 准备一个玻璃底的操作碟,操作液是CB的终浓度为5 μg/ml的TH3溶液。并滴加 3 μl的10% PVP 液体用来清洗注射针,用矿物油覆盖所有的溶液。
  3. 将显微操作臂和去核针调至适当位置,使用较大电压脉冲高等速度(5-6)和功率(4-5)在PVP液滴中清洗操作针,将10个MII左右的卵母细胞放入操作滴液中,采用纺锤体成像显微系统观察卵母细胞的纺锤体。在视线下,纺锤看起来像一个明亮的小薄片。
  4. 用持液针将卵母细胞固定在适当位置,并将纺锤体和去核针调整到同一水平面。使用压电装置以中等速度(2-3)和功率(2-3)打破透明带。携带尽可能少的细胞质将纺锤体吸出(图1. a,b,c)。
  5. 在一个操作液滴加适量2.5 mol/L融合病毒包膜(HVJ-E),将供体细胞滴加到这个操作滴中。将去核的卵母细胞移入其他操作滴中,用激光破膜仪在透明带打出一个通道。用注射针管吸取病毒液滴的供体细胞通过该通道注射进入卵母细胞(图1. d,e),之后在 37 °C、5% CO2条件下将操作的卵母细胞移入预平衡的HECM-9培养皿中。
  6. 细胞融合1-2 h后,将胚胎移入含5 mM ionomycin的TH3培养基中5 min,再移入激活液(10 μM TSA和2 mM 6-Dimethylaminopurine的HECM-9 溶液)5 h。激活后,将SCNT胚胎移入TSA终浓度为10 μM的HECM-9培养皿 3-5 h,再转回HECM-9培养皿中。
  7. 激活6小时后,对胚胎进行RNA注射,RNA注射针放入PVP滴液中清洗。将激活的胚胎转移到操作滴中,注入10个pL Kdm4d mRNA,其浓度在1,000 ng/μL以上(图1. f)。将操作后的胚胎在HECM-9中培养,37 °C,5% CO2,等待胚胎移植。

SCNT 过程

图1. a b c 为去核过程;d e 为供体成纤维细胞注射;f. kdm4d mRNA 注射。

溶液配方

  1. Tyrode's Albumin Lactate Pyruvate medium with HEPES (TH3)(表1)

    表1. Tyrode's Albumin Lactate Pyruvate medium with HEPES (TH3) 配制表
    成分/100ml/50ml备注
    NaCl3.329 ml1.665 ml200 mg/ml stock
    KCl239 μl119.5 μl100 mg/ml stock
    CaCl2·2H2O294 μl147 μl100 mg/ml stock
    MgCl2·6H2O102 μl51 μl100 mg/ml stock
    NaH2PO4 48 μl24 μl100 mg/ml stock
    NaHCO3 210.6 mg105.3 mg
    HEPES240 mg120 mg
    D-Glucose90 mg45 mg
    Sodium Pyruvate12 mg6 mg
    Sodium lactate (60% syrup)0.17 ml85 μl
    BSA300 mg150 mg
    penicillin-streptomycin (100X)1 ml500 μl
    Phenol Red (0.01%)10 μl5 μl
    pH7.4

  2. HECM-9(表2)

    表2. HECM-9 配制表
    成分/100ml终浓度
    NaCl0.6639 g113.6 mmol/L
    KCl0.0224 g3 mmol/L
    CaCl2·2H2O0.0279 g1.9 mmol/L
    MgCl2·6H2O0.0102 g0.5 mmol/L
    NaHCO3 0.2100 g25 mmol/L
    Sodium lactate (60% syrup)0.0504 g4.5 mmol/L
    PVA0.01 g0.1 mg/ml
    1 mol/L HCl0.14 ml1.4 mmol/ml
    11 AA with Pantothenate1 ml
    100X AA stock
    成分MW100X 母液浓度终浓度
    Taurine12550 mmol/L0.5 mmol/L
    Asparagine1321 mmol/L0.01 mmol/L
    Cysteine1211 mmol/L0.01 mmol/L
    Histidine1551 mmol/L0.01 mmol/L
    Lysine1461 mmol/L0.01 mmol/L
    Proline1151 mmol/L0.01 mmol/L
    Serine1051 mmol/L0.01 mmol/L
    Aspartic acid1331 mmol/L0.01 mmol/L
    Glycine751 mmol/L0.01 mmol/L
    Glutamic acid1471 mmol/L0.01 mmol/L
    Glutamine14620 mmol/L0.2 mmol/L
    Pantothenate2380.3 mmol/L3 μmol/L

  3. CMRL-1066(表3)

    表3. CMRL-1066 配制表
    /10 ml
    CMRL-1066
    10% FBS1 ml
    Sodium Pyruvate0.4 mg
    Glutamine1.5 mg
    Calcium lactate5.5 mg
    Estradiol1 μl
    Progesterone750 μl


  4. 成纤维细胞培养基(表4)

    表4. 成纤维细胞培养基配制表
    成分终浓度
    FBS15%
    penicillin100 IU/ml
    streptomycin100 IU/ml
    Glycine0.1 mM
    L-Alanine0.1 mM
    L-Asparagine0.1 mM
    L-Aspartic acid0.1 mM
    L-Glutamic Acid0.1 mM
    L-Proline0.1 mM
    L-Serine0.1 mM
    glutamax2 mM
    sodium pyruvate1 mM
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Copyright: © 2023 The Authors; exclusive licensee Bio-protocol LLC.
引用格式:王燕, 许玉婷, 李春杨, 孙强. (2023). 猴体细胞核移植. // 实验动物胚胎操作实验手册. Bio-101: e1010987. DOI: 10.21769/BioProtoc.1010987.
How to cite: Wang, Y., Xu, Y. T., Li, C. Y., and Sun, Q. (2023). Somatic Cell Nuclear Transfer of Monkeys. // Embryo Manipulation Manual of Laboratory Animals. Bio-101: e1010987. DOI: 10.21769/BioProtoc.1010987.
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