摘要:目前RNAi是在果蝇体内对基因进行功能分析最有力的工具之一。该技术使用简单,只需要一步遗传杂交,即可实现组织和时间特异性的基因干扰。全基因组RNAi文库的开发使得转基因RNAi品系几乎涵盖了果蝇基因组中的每一个基因,并且使得大规模体内RNAi筛选成为可能。然而,目前共有四个果蝇中心可提供RNAi品系,每个中心的RNAi品系又基于不同的载体,因此为挑选和使用果蝇RNAi品系造成了一定难度。本文对各个果蝇中心的RNAi文库进行介绍,并为RNAi品系的使用提供指南。
关键词: 果蝇, RNAi, 体内筛选, Gal4-UAS
材料与试剂
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提供RNAi品系的果蝇中心:
Vienna Drosophila Resource Center (VDRC): https://stockcenter.vdrc.at
Transgenic RNAi Project (TRiP): https://fgr.hms.harvard.edu/fly-in-vivo-rnai
National Institute of Genetics in Japan (NIG-FLY): https://shigen.nig.ac.jp/fly/nigfly
TsingHua Fly Center (THFC): http://fly.redbux.cn
实验步骤
一、RNAi文库介绍
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VDRC果蝇中心
维也纳的VDRC果蝇中心由Barry Dickson开创,其RNAi文库有着最高的基因组覆盖率,包括针对12,671个 (91%) 蛋白编码基因的26,957个转基因RNAi品系,由GD文库、KK文库、和shRNA文库组成。
GD文库在2007年公布 (Dietzl等,2007),将长反转重复序列 (平均长度为321 bp) 构建到UAS载体中,采用w+作为标记,并通过P-element随机插入至X, 2, 或3号染色体中。GD文库包含16,763个果蝇品系,针对11,292个 (81%)蛋白编码基因。由于RNAi载体的插入位点是随机的,它们在基因组中的位置会影响其表达水平,从而影响基因敲低的效率。据VDRC估计,超过80%的GD品系能够提供有效的基因特异性沉默。另一个必须注意的问题是RNAi的脱靶效应 (off-target)。长双链RNA (double-stranded RNA, dsRNA) 被加工成许多siRNA而发挥沉默效果,目前尚无法精确预测每个dsRNA所有的脱靶效应。尽管如此,GD文库被成功地应用于多个全基因组或大规模体内RNAi筛选。
2009年的KK文库在两个方面做了改进,首先它更新了目标序列设计以减少脱靶效应,其次它使用了基于phiC31的系统,预期将转基因定点插入于2号染色体40D3的attP-VIE-260B,从而消除位置效应。KK文库仍然使用长反转重复序列(平均长度为357 bp),包括了针对9,646个 (69%) 基因的9,822个品系,是GD文库的有益补充。然而研究表明,KK文库实际上有2个基因组整合位点,最初预期的40D3和实际位点30B3。在75%的KK品系中,RNAi载体仅插入30B3位点,并且没有问题;在25%的KK品系中,RNAi载体也插入40D3位点,并且与一些Gal4杂交时出现非特异性表型。因此在使用KK文库时一定要注意所观察到的表型是否属于假阳性,详情请参考https://stockcenter.vdrc.at/control/library_rnai中的KK library-landing site information以及文献 (Green等,2014;Vissers等,2016)。
由于短链hairpin RNA (shRNA) 较长链dsRNA具有更多优点 (见下文),VDRC从2016开始构建shRNA文库。该文库使用TRiP的WALIUM20载体,并全部整合于2号染色体的attP40位点,唯一的区别是WALIUM20采用w+作为选择标记,而TRiP所有的品系都使用v+作为选择标记。目前该文库已包括726个品系,并且还在陆续增加中,该文库所选择的hairpin序列靶向mRNA序列的不同区域而且独立于其它所有RNAi文库。
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哈佛医学院TRiP果蝇中心
自2008年以来,Norbert Perrimon领导的哈佛大学医学院果蝇中心不断地优化转基因RNAi方法并构建了TRiP文库 (Perkins等,2015)。目前TRiP文库包括了超过13,000个RNAi品系,覆盖了80%以上的蛋白编码基因,所有TRiP生产的果蝇品系都通过Bloomington Drosophila Stock Center (BDSC) 立即公开提供给社区使用。
TRiP使用一系列称为VALIUM的载体,并通过phiC31系统整合到二号染色体的attP40或三号染色体的attP2位点。由于担心white基因(w)的剂量在行为研究中的影响,所有VALIUM载体都使用vermillion (朱红眼, v) 作为选择标记。值得当心的是,将TRiP RNAi品系与w突变体背景的果蝇杂交产生的后代会出现各种眼睛颜色。
第一代VALIUM载体包括VALIUM1和VALIUM10,它们都导致400~600 bp的长链dsRNA的表达。VALIUM1的敲低效果相对较弱,而VALIUM10由于在hairpin两侧加了gypsy绝缘子,导致敲低效率提高;但两者在生殖细胞中的效果都不理想。第二代VALIUM载体VALIUM20和VALIUM22采用了短hairpin的shRNA设计,将21bp的靶向序列嵌入micro-RNA(miR-1)的骨架中。由于hairpin较短,这些shRNA品系可能比长链dsRNA品系具有更少的脱靶效应;同时由于shRNA被大量产生,它们比dsRNA品系具有更强的敲低效果。VALIUM22含有UASp启动子因此只适合于生殖细胞表达,而VALIUM20对体细胞和生殖细胞都取得了极好的敲低效果 (Ni等,2011)。所以VALIUM20是目前果蝇体内RNAi的最佳载体,占了TRiP文库中超过70%的品系。目前TRiP新构建的RNAi品系也都基于VALIUM20,而VDRC新构建的品系则使用类似的WALIUM20载体。尽管如此,并不是所有的VALIUM20 RNAi品系都起作用,一部分RNAi品系,特别是针对基因3’UTR区域的,不能产生有效的敲低效果 (Perkins等,2015)。
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日本NIG果蝇中心
从2005年开始,Ryu Ueda领导的日本National Institute of Genetics (NIG) 果蝇中心逐渐构建了包含12,389个果蝇品系的NIG-RNAi文库 (> 50%基因组覆盖率)。与VDRC的GD文库类似,这些品系采用长链dsRNA设计,以w+作为选择标记,并通过P-element随机整合到基因组中。注意少量NIG-RNAi品系被白眼果蝇污染,因此使用前要检查它们的眼睛颜色。此外,与TRiP合作,NIG现在也提供5,958个基于VALIUM20和22的shRNA品系,其中绝大部分与TRiP的品系相同。
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清华大学果蝇中心
倪建泉教授领导的清华大学果蝇中心 (TsingHua Fly Center, THFC) 成立于2011年,包含VALIUM系列的超过8,000个RNAi品系,其中大部分与TRiP的品系相同,然而有一部分是TRiP和BDSC所没有的。此外,THFC还维护着200个常用的Gal4品系;并提供构建新的shRNA RNAi品系的服务。
二、RNAi品系挑选
通过Flybase输入想要研究的基因名称,到达基因页面,点入Stock Availability,查看可以订购的果蝇品系:其中VDRC的RNAi品系名称里面包括GD, KK, 或VSH。TRiP品系名称中包含TRiP,以JF开头的可能基于VALIUM1或VALIUM10载体;以HM开头的基于VALIUM10载体;以HMS, HMC, HMJ开头的都基于VALIUM20载体;以GL开头的基于VALIUM22载体。
清华大学果蝇中心和日本NIG果蝇中心的RNAi品系没有整合到Flybase数据库中,因此需要到相应网站进行搜索。此外,可以到各个果蝇中心下载所有RNAi品系的列表,里面有hairpin设计和目标序列的详细信息。
三、Gal4品系使用
由于所有果蝇RNAi文库都基于UAS载体,它们必须与Gal4品系杂交才能发挥作用。全身性的敲低一般使用Actin5C-或Tubulin-Gal4,常见的组织特异性的Gal4包括Mef2-Gal4 (肌肉),elav-Gal4 (神经元),nanos-Gal4 (生殖细胞),ey-Gal4 (眼睛),nubbin-Gal4 (翅膀),ppl-Gal4 (脂肪体),myo1A-Gal4 (肠道)。RNAi实验一般在25~29 °C进行,由于Gal4的活性受温度影响,因此更高的温度会提高RNAi效率。
另一个增强RNAi效果的方法是过表达Dicer2 (Dcr2)。由于Dcr2处理长链dsRNA,但不处理短链shRNA,因此Dcr2只对基于长dsRNA的文库有效,例如VDRC GD, KK, NIG-RNAi, TRiP VALIUM1和VALIUM10。常用的GAL4已经和UAS-Dcr2重组在一起以利于使用,例如TRiP toolbox fly stocks (https://fgr.hms.harvard.edu/trip-toolbox) 所列出的。这些品系,以及在X, 2, 或3号染色体单独的UAS-Dcr2果蝇都可以从BDSC, VDRC或清华果蝇中心订购。此外,TRiP和VDRC还提供了可以用于实验对照的背景果蝇和RNAi品系 (https://fgr.hms.harvard.edu/trip-rnai-control-fly-stocks)。
结果与分析
对于RNAi实验而言,最重要的是需要对其敲低的表型进行验证,可以采用下面几个方法。
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检测敲低的效率
RNAi品系敲低的效率可以通过检测所对应的蛋白或mRNA水平的降低。如果有靶蛋白的抗体,可以通过免疫组化或Western Blot确定敲低效率;如果没有对应抗体,则只能通过qPCR测量mRNA水平的降低。总的来说,蛋白质水平上的测试比mRNA水平的测试更加可靠。
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使用独立的RNAi品系
由于针对不同序列的hairpin不太可能出现相同的脱靶效应,因此最简单的办法是使用多个独立的,针对非重叠区域的RNAi品系验证同一表型。注意不同的RNAi品系可能含有相同的hairpin,因此不属于独立的RNAi品系,例如有些VALIUM20和VALIUM22使用同样的shRNA序列。从Flybase基因的JBrowse可以很方便地看到每个RNAi所针对的序列。如果没有额外的RNAi品系,则需要使用相应文库的载体自己克隆并构建新的RNAi品系。
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采用sgRNA验证RNAi表型
最终,RNAi所引起的表型可以通过分析遗传突变体进行确认,特别是利用CRISPR/Cas9基因编辑系统。目前TRiP和NIG已经开始大规模构建转基因sgRNA品系,结合各种组织特异性表达的Cas9品系,sgRNA文库将是RNAi文库非常有益的补充。
致谢
严冬实验室的工作得到国家自然科学基金31771586,91857114,上海市科委17PJ1410300以及中国科学院的支持。
参考文献
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Dietzl, G., Chen, D., Schnorrer, F., Su, K. C., Barinova, Y., Fellner, M., Gasser, B., Kinsey, K., Oppel, S., Scheiblauer, S., Couto, A., Marra, V., Keleman, K. and Dickson, B. J. (2007). A genome-wide transgenic RNAi library for conditional gene inactivation in Drosophila. Nature 448(7150): 151-156.
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Green, E. W., Fedele, G., Giorgini, F. and Kyriacou, C. P. (2014). A Drosophila RNAi collection is subject to dominant phenotypic effects. Nat Methods 11(3): 222-223.
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Ni, J. Q., Zhou, R., Czech, B., Liu, L. P., Holderbaum, L., Yang-Zhou, D., Shim, H. S., Tao, R., Handler, D., Karpowicz, P., Binari, R., Booker, M., Brennecke, J., Perkins, L. A., Hannon, G. J. and Perrimon, N. (2011). A genome-scale shRNA resource for transgenic RNAi in Drosophila. Nat Methods 8(5): 405-407.
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Perkins, L. A., Holderbaum, L., Tao, R., Hu, Y., Sopko, R., McCall, K., Yang-Zhou, D., Flockhart, I., Binari, R., Shim, H. S., Miller, A., Housden, A., Foos, M., Randkelv, S., Kelley, C., Namgyal, P., Villalta, C., Liu, L. P., Jiang, X., Huan-Huan, Q., Wang, X., Fujiyama, A., Toyoda, A., Ayers, K., Blum, A., Czech, B., Neumuller, R., Yan, D., Cavallaro, A., Hibbard, K., Hall, D., Cooley, L., Hannon, G. J., Lehmann, R., Parks, A., Mohr, S. E., Ueda, R., Kondo, S., Ni, J. Q. and Perrimon, N. (2015). The transgenic RNAi project at Harvard Medical School: resources and validation. Genetics 201(3): 843-852.
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Vissers, J. H., Manning, S. A., Kulkarni, A. and Harvey, K. F. (2016). A Drosophila RNAi library modulates Hippo pathway-dependent tissue growth. Nat Commun 7: 10368.
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