一、视频摘要
取新鲜抗凝人外周全血,平铺于分离液的梯度界面之上,离心后取中性粒细胞层,用细胞洗涤液清洗细胞后,加入红细胞裂解液去除红细胞,再用细胞洗涤液清洗细胞后,用细胞培养液重悬细胞并镜下观察。
对分离后的细胞进行Ly6G/6C-PE-多抗和CD11b-FITC-多抗双染后,用流式细胞仪检测人中性粒细胞的纯度。结果表明中性粒细胞测定的纯度达到90%以上,可用作后续实验。
二、关键词
密度梯度离心法、提取中性粒细胞、人外周血
三、实验样品信息,试剂、耗材或仪器
3.1 实验样品信息
采用健康志愿者的新鲜血液
3.2 试剂和耗材
试剂:
人外周血中性粒细胞分离试剂盒(TBDscience,
China)(分离液试剂A、C,红细胞裂解液,细胞洗涤液)
RPMI
1640细胞培养基(Bio-protocol,
China)
耗材:
50ml离心管、15ml离心管、1ml枪头、10ml巴氏管
3.3 仪器
流式细胞仪(
BD,
USA),离心机,显微镜
四、实验操作
4.1 取新鲜抗凝人外周全血15
cc。
4.2 准备一支离心管,依次加入10
ml试剂A,后小心叠加5
ml试剂C,形成梯度界面。用巴氏徳吸管小心吸取血液平分铺在分离液液面上方,注意保持两液面界面清晰。
4.3 低温,1000
g,离心30
min。
4.4 离心后,稀释液层下出现两层白色环状细胞层,取下层白色环状中性粒细胞层移至新的离心管。
4.5 加入2-3倍体积的细胞洗涤液混匀。400
g,离心10
min,弃上清。
4.6 加入3-4ml红细胞裂解液重悬,4℃冰箱裂解10
min。300
g,离心10
min,弃上清。
4.7 重复步骤
4.5,用细胞培养基重悬细胞备用。
五、注意事项
5.1 在分离液上方平铺血液,形成梯度界面时,如果样品较多,加样的时间较长,在离心前出现红细胞成团下沉属正常现象。
5.2 离心结束后出现分层现象时,由于个体差异或者分离条件不同,粒细胞层分离可能会不明显。
5.3 在红细胞裂解过程中,红细胞是否裂解彻底取决于红细胞裂解液的处理量和处理时间,若裂解过度将影响中性粒细胞活性,出现成团现象;若裂解不彻底,过多红细胞会影响后续实验。
六、实验结果
1.镜下观察
图1 分离后的细胞(低倍镜)
图2 分离后的细胞(高倍镜)
图2 分离后的细胞(高倍镜)
2.流式
对分离后的细胞进行Ly6G/6C-PE-鼠多克隆抗体和CD11b-FITC-鼠多克隆抗体双染后,用流式细胞仪检测人外周血中性粒细胞的纯度。检测结果为CD11b+Ly6G/6C+的细胞占总细胞的93.1%,分离得到的细胞可以用于后续实验。
注:
a:空白对照组;b:Ly6G/6C-PE-多抗单染组;
c:CD11b-FITC-多抗单染组;d:CD11b-FITC-多抗和Ly6G/6C-PE-多抗双染组
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