实验原理：组蛋白是一类碱性蛋白，且分子量很小，这里介绍的组蛋白抽提方法不能得到非常纯的组蛋白，只是相对富集分子量较小的碱性蛋白，但是基本能满足一般的实验要求。
关键词: 组蛋白, 三氯乙酸, 水稻
材料与试剂
仪器设备
实验步骤
注意事项
溶液配方
如果您对本实验方案有任何疑问/意见, 强烈建议您发布在此处。我们将邀请本文作者以及部分用户回答您的问题/意见。为了作者与用户间沟通流畅（作者能准确理解您所遇到的问题并给与正确的建议），我们鼓励用户用图片的形式来说明遇到的问题。
4 X Lamini buffer 配方: 200mM Tris-HCl(pH6.8) 8% SDS 0.4% 溴酚蓝 40% 甘油 4%巯基乙醇 . NP-40属于非离子性温和去垢剂，对于核蛋白抽提的裂解效果不是很好，我们蛋白裂解液选择去垢剂的标准是： 细胞质蛋白：1% Triton X-100（一种足够）, 细胞核蛋白： 1% Triton X-100 +0.1%SDS+0.5% Sodium deoxycholate（三种混合使用）
溶解以后
感谢您的回答，还想请教两个问题加入 Laemmli buffer溶解里面有溴酚蓝，会影响蛋白定量麽，另一个是 Laemmli buffer可以用SDS蛋白上样缓冲液代替么
我也有遇到过
抽提组蛋白过程用的是三氯乙酸酸性抽提法（组蛋白是碱性蛋白，通过这种酸性试剂进行富集），但三氯乙酸属于强酸，裂解时除了组蛋白外很多细胞内物质同时被裂解释放，最终抽提完成后的出现的大部分白色部分，大概为：其他的细胞物质的碎片，组蛋白在白色沉淀中只占很小一部分，因为组蛋白分子量比较小，后续可以用lamini buffer 85℃ 孵育可以辅助溶解，而分子量较大或者更为复杂的其他物质在无充足SDS条件下，强酸变性聚集成块，很难溶解，如同鸡蛋清煮熟成块一样。可以利用加入lamini Buffer 85℃延长孵育时间增加组蛋白溶解（丙酮洗涤作用只是除去叶绿素等色素的作用，让抽提纯度会提高一点）
那你是怎么解决的？
不溶解的可能不是组蛋白而是其它的杂质