分根体系的搜索结果

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利用无菌植物和可培养细菌体系研究根系微生物组功能
Utilization of Axenic Plants and Cultivated Bacteria for Studying Root Microbiota’s Function
Authors:  徐浩然张婧赢, 曲宝原, 刘永鑫, 白洋 and date: 04/27/2021, view: 3739, Q&A: 0
向体系中移栽无菌苗。挑选长势一致的植物无菌苗，使用无菌镊子将无菌苗从培养基中拔出，用无菌去离子水中洗去根上残留的培养基，移栽至组培瓶内。封闭体系。使用3 M微孔通气胶带封闭组培瓶的打孔处及所有连接处。 研究背景以群落形式聚集于植物根内或根表的根系微生物组 (Microbiota) 以其促进植物生长、帮助植物营养吸收 (Zhang et al., 2019)、抵抗极端环境 (Xu et al., 2018 3120000038, 3120000046, 3120000054, 3120000062) 电子天
毛白杨-根系内生真菌互作体系构建方法
Construction of Poplar-Root Symbiotic Fungi Interaction System
Authors:  单晓亮何兴华, 潘雪玉, 彭龙, 姚佳佳, 袁志林 and date: 04/29/2021, view: 2919, Q&A: 0
真菌孢子液接种 (植物组培盒无菌培养和温室控根盆栽培养体系) 4.1植物组培盒无菌培养体系：使用上面获取的孢子悬浮液 (1 × 105个/ml) 进行接种，接种过程中严格保持无菌操作，每盒无菌苗中用移液器打入 4.2温室大棚盆栽培养体系：接种毛白杨幼苗根系的具体方法如下，将炼苗后的毛白杨幼苗根系，浸在浓度为1 × 105个/ml孢子悬浮液中10 min，然后移入控根花盆中培养。 完成接种移栽的幼苗在光照温度同 (四) 1的条件下培养，每周用二分之一改良霍格兰德营养液浇灌两次，保持幼苗和土
影响系统发育分析的昆虫共生菌Wolbachia筛查及分型方法
Screening and Typing of Symbiotic Wolbachia that Affects Insect Phylogenetic Analysis
Authors:  赵紫苗方洁, 沈利, 蒋韦斌 and date: 06/11/2021, view: 2825, Q&A: 0
二、Wolbachia菌的筛查与分型Wolbachia菌的特异性基因引物的PCR检测 实验采用25 μl的PCR扩增反应体系，具体组份如下。 表1. 25 μl PCR反应体系组份体积2x TapPCR. 琼脂糖 (上海天根)Sanprep柱式DNA胶回收试剂盒 (上海生工，catalog number: SK8132)核酸染料 (O.P.D)DNA Marker (上海天根)蛋白酶K (上海天根)仪器设备无菌剪刀 因此，对Wolbachia菌的分型采用扩增5个基因 (
基于表面等离子共振技术构建色氨酰tRNA合成酶的抑制剂筛选和验证体系
Establishment of Inhibitor Screening and Validation System for Tryptophanyl tRNA Synthetase Using Surface Plasmon Resonance
Authors:  王倩朱贵旺, 刘振明 and date: 11/08/2024, view: 847, Q&A: 0
其余三根进液管（B、C和D）放在左侧的舱门后。废液瓶和去离子水瓶的放置同实验步骤第一部分《1. 实验前的准备》中的内容。 （2）SA芯片的放置。具体步骤同实验步骤第一部分《1. 其余三根进液管（B、C和D）放在左侧的舱门后。废液瓶和去离子水瓶的放置同实验步骤第一部分《1. 实验前的准备》中的内容。 （4）SA芯片的放置。芯片的放置同实验步骤第一部分《1. 其余三根进液管（B、C和D）放在左侧的舱门后。废液瓶和去离子水瓶的放置同实验步骤第一部分《1. 实
矿区先锋植物根内生促生菌的高效分离与群落稳定构建
The Efficient Isolation of Growth-Promoting Endophytic Bacteria from Pioneer Plants in Mining Areas and the Stable Construction of Microbial Communities
Authors:  高寒冰何晓, 贾沃, 郭朝晖, 徐锐 and date: 11/08/2024, view: 2310, Q&A: 0
然后，将细菌培养液以8,000 r/min离心10分钟，收集上清液（SM），并通过0.22 μm的无菌滤膜过滤。 将无菌培养体系置于25 °C，16 h光照，25%湿度的培养间内培养7 d。 基于此，本研究提出了一种用于识别、分离、高效合成矿区先锋植物根际促生菌群的方法。主要流程 首先快速判断和筛选出具有分选潜力的先锋植物根际样品。 因此，根际微生物接种已成为促进植物修复的重要方法[2]。 将上述体系用排枪吹打混匀后用扣盖，在水浴锅（95 °C，30min）裂解菌体。冷却降温后，向每孔中
利用13C-DNA-SIP法示踪根际和菌丝际活性解磷细菌
13C-DNA-SIP Method for Tracing Rhizosphere and Hyphosphere Phosphate Solubilizing Bacteria
Authors:  周家超冯固 and date: 04/13/2021, view: 3796, Q&A: 0
分根培养系统和二氧化碳同位素脉冲标记装置 注：培养体系由4个分室组成，中间有两个根室，另外两个为菌丝室。每个分室为5 cm × 5 cm × 12 cm，由PVC板组合而成。 二、 供试装置 为了达到在同一植物根系上接种两种不同AM真菌的目的，试验采用分根培养的根盒。 八、 样品收获 标记结束后的第二天，拆除标记装置，破坏性取样，地上部分用去离子水洗净，吸水纸擦干，地下部分首先用抖根法
甘蔗根系细菌高通量分离培养与鉴定技术
Techniques For High-throughput Isolation and Identification of Sugarcane Rhizospheric Bacteria
Authors:  毕新萍杨翼航, 利晓彤, 胡志剑, 梁志彬, 邓懿祯 and date: 08/05/2025, view: 990, Q&A: 0
... 扩增体系如表3所示，扩增程序如表4所示。表3. 根系组织样品研磨原液三、稀释液的配置以及培养 将得到的根系组织研磨原液用TSB培养基稀释到原来浓度的十分之一，得到10-1的稀释液，即300 μL原液加入2.7 mL的TSB培养基；对10-1的稀释液进行进一步稀释 第一轮PCR检测的扩增体系和程序分别见表1和表2所示。表1. 检测结果表明，阴性对照孔中的序列读取量几乎都低于18，证明了PCR鉴定体系的有效性和可靠性（图7）。图7. 将根际土原液按照步骤1中稀释根系组织研磨原液的方法进行稀释，得到10
利用SPR技术高通量筛选蛋白互作活性小分子
High-Throughput Screening for Small Molecules Interacting with Targeted Protein by SPR Technology
Authors:  刘伟谢华彬, 王烁英, 慈云青, 许超, 兰姝珏, 陈铭 and date: 03/06/2025, view: 2038, Q&A: 0
... 在该筛选体系中，选择标准分液盒来进行化合物稀释；通过注射器反推无菌ddH2O方式保证分液盒喷头出液顺畅；准备清洁分液盒管道的各溶S液各500 mL。 在仪器上安装好对应芯片之后，将Biacore 8K仪器右外侧标记为“Buffer”以及“Reagent”两根管道插入体积为1 L的运行缓冲液Buffer-A中。 操作Biacore 8K仪器外侧“Buffer”以及“Reagent”两根管道切换到不同运行缓冲液时，应用无菌ddH2O浸湿过的洁净无尘纸捏住管道外壁来切换溶液，避免手套直