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基于DNA宏条形码的水体浮游细菌群落测序建库方法
Library Construction for DNA Metabarcoding of Bacterioplankton Communities in Waters
Authors:  肖鹏续子杰, 杨军 and date: 04/27/2021, view: 2381, Q&A: 0
浮游细菌的PCR扩增2.1将提取好的环境样品DNA进行分组建,30个样品一个,样品编号ID和顺序提前记录在实验记录本上。 将合成好的引物放入离心机中,14,000 × g离心3 min,在超净工作台中将引物用无菌去离子水稀释到10 μM的浓度 (超净工作台应提前按步骤1中的方法灭菌),使用1.5 ml无菌离心管,将正反引物分别取 5.3测定完一个的30个样品的DNA浓度之后,若中样品最低浓度小于4 ng/μl,需要将相应低浓度的样品重新进行PCR扩增与纯化后,再定量。 然后浓度
基于DNA宏条形码的水体微型真核生物群落测序建库方法
Library Construction for DNA Metabarcoding of Microeukaryotic Communities in Waters
Authors:  莫媛媛马国琳, 薛媛媛, 杨军 and date: 04/23/2021, view: 3594, Q&A: 1
即以浓度最低样品的混体积14 μl为标准,计算其他样品的混体积,具体计算方法为DNA总量÷样品的DNA浓度。 微型真核生物群落中所用的引物序列信息,以18S rRNA基因V9区为例3)将存放于?40 °C冰箱的PCR引物取出,置于离心机进行离心,条件为14,000 g离心3 min。 6.4提前在实验记录本上写好每个的样品编号,每测一份样品,立刻记录其浓度。测定完一个后,若中样品最低DNA浓度小于4 ng/μl,则需将低浓度的样品重新进行
Cas-16S-seq:利用CRISPR/Cas9靶向消除16S-seq中高丰度植物序列的方法
Cas-16S-seq: Using CRISPR/Cas9 to Eliminate Abundant Plant Sequences in 16S-seq
Authors:  宋露洋谢卡斌 and date: 04/13/2021, view: 2957, Q&A: 0
Cas-16S-seq方法 (Cas9+)和常规16S-seq方法 (Cas9-),#1-#3代表的是三个生物学重复,*代表水稻线粒体799F-1193R的扩增子序列。 CRISPR/Cas9靶位点 (即gRNA设计) 分析流程图从公共数据下载高质量的原核生物16S rRNA基因序列。 注:在分析cp-gRNAs特异性时,需要注意RDP数据中含有叶绿体序列,可分析过程中可以把RDP中叶绿体序列排除在外。 二轮扩增产物利用上述“16S rRN
基于高通量测序的全长DNA条形码获取方法
Methods for Obtaining Full-length DNA Barcodes Using High-throughput Sequencing
Authors:  杨琛涛周程冉, 刘山林, 周欣 and date: 08/25/2021, view: 5283, Q&A: 0
PCR产物质量检测合格后,选取一份混合产物送至测序公司进行与测序。插入片段为250 bp小片段。 以上三种方法相互独立,测序及分析策略不同,但是在前期样品准备,DNA提取和PCR操作等方面基本一致,所以在此操作手册中,我们将三种方法的实施步骤及相关比较纳入其中,方便研究者选择合适的测序平台和后续的分析方法 在完成PCR产物的混合后,可选择一种平台进行后续的测序。 选取一份扩增产物混合
细菌转录组分析样品制备方法
Sample Preparation for Bacterial Transcriptome Analysis
Authors:  武迎春郝光飞, 韩东飞 and date: 04/13/2021, view: 4314, Q&A: 0
相比较固定投入量,固定酶切时间的TN5,酶切法适用500~1 μg,满足个性化。 其次,流程精简。一步完成片段化、末端修复、加A、纯化等。 末端修复加A (30 min)-接头连接 (15 min)-纯化、分选 (30 min)-文库扩增 (15 min)-纯化分选 (30 min),常规预计耗时约2 h, PCR-free预计耗时 九、 若所测cDNA文库
R-ChIP: 利用失活RNase H1来构建全基因组范围内 R-loop图谱的文库
R-ChIP: Genome-wide Mapping of R-loops by Using Inactive RNase H
Authors:  江翱张显红, 周宇, 陈加余, 陈亮 and date: 09/15/2022, view: 2196, Q&A: 0
... 该方法相较于依赖S9.6抗体方法更加真实的反映了体内R-loop的分布,将分辨率提高到200-300 bp,并且链特异性方法可以获得链方向性的信息从而判断转录方向。 该类方法的原理是利用S9.6抗体特异性识别R-loop的特性,在体外富集限制酶消化后的基因组片段,并对富集到的R-loop结构进行及高通量测序。 R-ChIP便是通过在体内过表达RNase H1 D210N突变体,由其靶向杂合链结
基于高通量测序技术的丛枝菌根真菌多样性研究方法
High-throughput Sequencing-based Method for Characterizing Biodiversity of Arbuscular Mycorrhizal Fungi
Authors:  付伟武慧, 陈保冬 and date: 04/22/2021, view: 6471, Q&A: 0
因此须自行根据MaarjAM格式请参考DADA2官网。 PCR产物经纯化、混样 (等摩尔浓度)、后,使用Illumina MiSeq PE300进行双端测序,测序深度建议大于10,000条reads。扩增与测序也可交由测序服务商进行。 如使用DADA2中的朴素贝叶斯分类算法 (Naive Bayesian classifier),可使用Sliva 18S数据,但是本数据并不是AM真菌的专一数据,比对效果不及Maar
微生物组的定量宏基因组学和定量宏转录组学方法
Quantitative Metagenomics and Metatranscriptomics Methods of Microbiome
Authors:  黄昕瑜张璐, 袁凌, 鞠峰 and date: 04/13/2021, view: 6211, Q&A: 1
这个添加时间点考虑了破胞后DNA和RNA提取、过程中造成的核酸损失,可以用来计算基于样品体积、质量或生物量的基因或转录本绝对拷贝数。 注意:如果研究的重点是小RNA或短转录本,则可以缩小内标的长度;高GC的核酸片段更容易形成二级结构,在常规过程中难以被扩增,难以被打断,其最终的测序丰度信息往往会受此影响而偏低。 150)的测序策略在Illumina的Hiseq4000平台上对构建的DNA和cDNA文库进行测序(实际测序策略和测序平台的选择并不局限于本文示例,可根据实际实验需求对添加完内标的DNA和cDNA文库选择
秀丽隐杆线虫小RNA提取与多磷酸修饰处理
Extracting and Sequencing of Small Interfering RNAs in Caenorhabditis elegans
Authors:  曾陈明翁晨春, 朱成明, 光寿红 and date: 09/15/2022, view: 1351, Q&A: 0
... 22G RNA长为22 nt,5’末端为G且具有三磷酸修饰,使得该RNA并不能直接测序。 对这一类22G RNA进行测序时,需要将RNA的5’末端的三磷酸处理为单磷酸结构,进而进行测序(Ruby et al., 2006; Gu et al., 2012)。 使用CIAP和T4 PNK处理,可以对三磷酸修饰的小RNA后续的和测序。材料与试剂一、一次性耗材Billi, A. C., Fischer, S. E. and Kim, J. 溶液送测序公司,每个RNA样品3μ